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成分 | 货号 |
---|---|
Gibco MEM | 10370021 |
10% Gibco FBS | A3160401 |
1X GlutaMAX 添加剂 | 35050061 |
1 mM Gibco 丙酮酸钠 | 11360070 |
适当的培养技术和程序是确保转染成功的重要组成部分。传代培养(也称为传代)是指移除培养基并将培养物中的细胞转移到新鲜的生长培养基中,从而实现细胞增殖。 请参阅我们为本实验方案提供的产品列表
在转染当天(即细胞铺板后1天)执行以下步骤,这些步骤已针对使用 Invitrogen Lipofectamine 3000 转染试剂处理24孔板的单孔进行了优化:
步骤 | 管 | 复合成分 | 每孔用量 (24孔) |
---|---|---|---|
1 | 管1 | Opti-MEM I 培养基 | 25 μL |
Lipofectamine 3000 试剂 | 1.5 μL | ||
2 | 管2 | Opti-MEM I 培养基 | 25 μL |
DNA 量(DNA 浓度应为 0.5–5 μg/μL) | 0.5 μL | ||
P3000™ 试剂 | 1 μL | ||
3 | 将管2溶液加入管1中,混匀 | ||
4 | 将步骤3所得混合物在室温下孵育 10-15 min | ||
5 | 向细胞中加入 50 μL 步骤4所得复合物; 轻轻涡旋平板,确保复合物均匀分布至整个孔中 |
在转染 GFP 报告基因构建体后 48 h,通过显微镜和流式细胞仪评价细胞。为了评估转染效率,首先通过荧光显微镜观察细胞,以定性评估蛋白表达、形态和活力(图1)。然后,通过吸出培养基并替换为 250 μL 由 TrypLE 试剂与 1X DPBS (7:3) 组成的混合物,制备用于流式细胞分析的细胞。将细胞置于 37℃ 下孵育 10 min,然后使用移液器上下吹吸,确保以单细胞状态进行流式细胞分析。
图1.细胞转染后分析。(A) 荧光和 (B) 明场图像显示,转染效率为 75%-85%。
使用下表按比例缩放转染实验中各成分的用量。下面列出了最常见的实验规格。
培养容器 | 倍增系数* | 共用试剂 | DNA 转染 | siRNA 转染 | ||||
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生长培养基 | 用于制备复合物的 Opti-MEM 培养基 | DNA | P3000 试剂 | Lipofectamine 3000 试剂** | siRNA | Lipofectamine 3000 试剂** | ||
96孔 | 0.2 | 100 μL | 2 x 5 μL | 0.1 µg | 0.2 µL | 0.3 µL | 3 pmol | 0.3 µL |
48孔 | 0.5 | 250 μL | 2 x 12.5 μL | 0.25 µg | 0.5 µL | 0.75 µL | 7.5 pmol | 0.75 µL |
24孔 | 1 | 500 μL | 2 x 25 μL | 0.5 µg | 1 µL | 1.5 µL | 15 pmol | 1.5 µL |
12孔 | 2 | 1 mL | 2 x 50 μL | 1 µg | 2 µL | 3 µL | 30 pmol | 3 µL |
6孔 | 5 | 2 mL | 2 x 125 μL | 2.5 µg | 5 µL | 7.5 µL | 75 pmol | 7.5 µL |
60 mm | 11.05 | 5 mL | 2 x 250 μL | 5.5–11 µg | 11–22 µL | 17 µL | 166 pmol | 17 µL |
10 cm | 28.95 | 10 mL | 2 x 500 μL | 14–28 µg | 28–56 µL | 43 µL | 434 pmol | 43 µL |
T-75 | 39.47 | 15 mL | 2 x 750 μL | 20–40 µg | 40–80 µL | 59 µL | 592 pmol | 59 µL |
T-175 | 92.11 | 35 mL | 2 x 1.75 mL | 46–96 µg | 92–180 µL | 138 µL | 1,382 pmol | 138 µL |
*确定最佳试剂用量后,使用倍增系数确定新平板规格所需的试剂用量。
**根据方案确定所需的 Lipofectamine 3000 转染试剂最佳用量。
欲了解更多信息,请访问 thermofisher.com/3000
仅供科研使用,不可用于诊断目的。