- 从 T-25 培养瓶中倒出培养基,并使用 3 mL(T-75 培养瓶使用 5 mL)无钙和无镁 D-PBS(货号 14190)洗涤单层。培养物应为 50% 至 80% 汇合度,以确保细胞主动分裂。
- 倒出 PBS。加入 3 mL(T-75 培养瓶加入 5 mL)胰蛋白酶-EDTA(0.05% 胰蛋白酶、0.53 mM EDTA·4Na,货号 25300)。短暂旋转并倒出胰蛋白酶-EDTA,但留下一层液体薄膜覆盖单层。在显微镜下观察细胞。当细胞聚拢时,在实验台上轻敲培养瓶,以分散细胞。
- 向细胞悬浮液中加入 6 mL 培养基(T-75 培养瓶加入 10 mL),并以 100 X g 离心 4 分钟。连同上清液吸出稀释的胰蛋白酶。对于无血清培养基,我们建议使用大豆胰蛋白酶抑制剂(货号 17075)来终止酶促作用。制备大豆胰蛋白酶抑制剂的 0.25 mg/mL 储备液。此储备液与胰蛋白酶溶液按 1:1 (v:v) 的比例配合使用。
- 倒出上清液,并重复步骤 3。
- 倒出上清液,将细胞重悬于 5 mL 培养基中。取出等份试液,以确定活细胞计数。
- 测定 5 x 105 个活细胞/mL 所需的细胞悬浮液体积。向无菌转瓶或摇瓶中加入适量培养基和细胞悬浮液。留出足够的顶空以进行充分的气体交换(即,250 mL 转瓶中加入 100 mL 培养基,或 250 mL 摇瓶中加入 75 至 100 mL 培养基)。对于已经不含剪切保护剂的无血清培养基,添加 PLURONIC® F68,使得最终浓度为 0.1%。
- 松开盖子以进行气体交换,并将其置于 37oC、空气中含 5% 至 10% CO2 的湿润环境下。将叶轮转速设置为 75-95 rpm(Corning 转瓶;对于搅拌桨型叶轮,转速可能需要降低)。摇瓶可在定轨摇床平台上以 125 至 135 rpm 的转速进行旋转。
注:您可以将转瓶叶轮转速设置为您的正常转速(80 至 100 rpm)。如果细胞存活率降至 85% 以下,则以 10 rpm 的减量降低转速,直至存活率良好。
- 每日检查活细胞密度,以确定悬浮培养物中的生长动力学。
- 当活细胞密度达到 1 x 106 个细胞/mL 时(或接种后第 4 天),以 5 x 105 个细胞/mL 的密度对细胞进行传代(如果细胞密度在第 4 天时未达到 1 x 106个细胞/mL,可能需要离心然后添加新鲜培养基)。
- 一旦接种后第 3 天时细胞密度达到至少 1 x 106个细胞/mL,存活率至少为 90%,持续了 3 代,则可认为细胞适用于悬浮培养。接种密度可降低至 2 x 105 至 3 x 105 个细胞/mL。
PLURONIC® 是 BASF Corporation 的注册商标。