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以下是一些可能的原因及我们的建议:
没有充分去除游离染料可能造成高背景。尝试使用HPLC或凝胶电泳纯化寡核苷酸确保去除没有反应的染料。
你可以尝试使用合适的基于离心柱的方法纯化ChromaTide标记的探针以去除未掺入的ChromaTide核苷酸。乙醇沉淀可能不能有效的去除未掺入的ChromaTide核苷酸,因此需要使用离心柱进行纯化。
使用BrightStarPsoralen-Biotin非同位素标记试剂盒对核酸标记后将不能在260 nm波长下对核酸进行定量,因为补骨脂素在此波长上也有吸收峰,会干扰准确读数并可能破坏生物素与核酸的交联。建议在使用BrightStarPsoralen-Biotin非同位素标记试剂盒前对核酸进行定量。该方法标记后的产率将达到90–100%,在正丁醇萃取步骤会有轻微的损失。
如果试剂盒提供的阳性对照在100 fg 至1 pg范围内可被检测到,说明BrightStar Psoralen-Biotin 非同位素标记试剂盒以及生物素检测系统是正常工作的,但是测试核酸标记效率低,我们建议将起始材料进行凝胶电泳以确定它的完整性。如果通过凝胶电泳证明测试核酸是完好的,那么可能存在干扰标记反应的抑制剂。来自于体外转录反应或PCR反应的游离核苷酸的存在可能会造成这一问题。可以通过盐/乙醇或异丙醇沉淀,然后用70%乙醇洗涤以除去游离核苷酸。使用BrightStar Psoralen-Biotin 非同位素标记试剂盒时有很多因素会影响对核酸的高效标记。标记实验一定要严格按照要求进行操作。下面列出了一些关键的变量:
下面一些建议可能有助于降低使用BrightStar Psoralen-Biotin 非同位素标记试剂盒进行印迹杂交实验时的背景:
核酸底物中可能有抑制剂。如有必要,可以使用酚:氯仿:异戊醇提取加离心柱纯化的方法纯化您想要标记的核酸。另外,RNA的5’末端有可能因为三级结构不容易被接触到。在这种情况下,可以尝试在反应前将RNA在90°C加热5分钟,然后立刻将其置于冰上。
我们建议使用酚/氯仿提取加乙醇沉淀的方法纯化激酶反应产物,然后洗脱DNA。如果这样仍然不行,可以使用离心柱层析或变性聚丙烯酰胺凝胶电泳进一步纯化反应产物。
For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.