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我们致力于确保您的成功,让您重回正轨。敬请浏览我们就您常见的问题提供的专业建议。
浏览下列相关问题答疑:
请查看以下可能原因和建议:
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尽管您将要挑选的是白色(重组)菌落,但是您也应该预期会看到一些蓝色(含非重组杆粒)菌落。以下是关于无蓝色菌落的可能原因和建议:
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我们建议利用PCR对重组杆粒DNA进行分析。使用pUC/M13正向和反向引物可帮助PCR分析,引物的杂交位点为lacZalpha互补区域内的mini-attTn7位点的侧翼。关于更多使用说明,请查看使用手册第32页。
菌落的颜色区别很小可能是因为:
这可能是因为:
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以下是针对该问题的可能原因和建议:
最可能是挑选了中心为灰色或黑色的菌落。尝试分析更多的白色DH10Bac™转化子。通常,我们建议挑选直径大于2 mm的白色菌落。将白色菌落在含50 µg/mL卡那霉素、7 µg/mL庆大霉素、10 µg/mL四环素、100 µg/mL Bluo-gal和40 µg/mL IPTG的新鲜的培养板上再次划线。孵育培养板24小时。
这可能是因为来自杆粒制备的污染或细胞毒性。应设置无Cellfectin II试剂的杆粒阴性对照组。此外,在制备杆粒时,应使用PureLink HiPure质粒制备试剂盒,而不是基于硅胶的小量提取试剂盒。
有多种可能原因:
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检查MOI。P1病毒的滴度低于估计值,可能导致MOI较低。
请查看以下可能原因以及关于提高得率的建议:
蛋白得率较低可能是因为:
这种情况可发生于:
放大后,应调整MOI和收获时间。
请查看以下可能原因和解决方案:
用于培养昆虫细胞的培养基通常具有酸性pH(6.0-6.5)或含有电子供应基团,可阻止6xHis标签蛋白与Ni-NTA发生结合。昆虫细胞生长培养基所含谷氨酰胺、甘氨酸或组氨酸等氨基酸的浓度显著高于哺乳细胞生长培养基,这些氨基酸可与6xHis标签蛋白竞争Ni-NTA基质上的结合位点。例如,Grace’s培养基(Life Technologies)含有约10 mM谷氨酰胺、10 mM甘氨酸和15 mM组氨酸。
使用含适当成分和pH(8.0)的缓冲液对培养基进行透析,透析用缓冲液与在天然条件下进行纯化所使用的推荐裂解缓冲液相似,通常可恢复最佳的结合条件。应注意,选用的培养基可能导致出现白色沉淀(可能由不溶性盐组成),但6xHis标签蛋白通常留在溶液中。使用无蛋白质的培养基时,可通过蛋白质定量进行检测;或者利用免疫印迹分析法检测6xHis标签蛋白的含量。离心后,可从清澈的上清液中直接纯化6xHis标签蛋白。
如果您在使用SF-900™ II SFM,它与乙酸铵沉淀法不兼容。我们的SF-900™ II无血清培养基含有大量共聚物非离子表面活性剂Pluronic F-68,它已被发现会干扰乙酸铵沉淀。如果您将未浓缩的上清液加到纯化柱上,则应该没有问题。如果上清液经过浓缩,则需要使用柱子除去Pluronic酸。
在37°C水浴中温浴更昔洛韦5-10分钟,然后涡旋数分钟。沉淀应该重新溶解于溶液中。
请查看以下建议:
为得到高滴度储液,应使用P1储液再次感染细胞并生成P2高滴度储液。按照BaculoDirect™使用手册第18页的说明,生成P2储液。
请检验入门克隆的构建,应确保插入片段位于载体读码框内。在LR反应后,利用PCR法分析重组病毒DNA,确认插入片段的大小和方向均正确。对PCR产物进行测序,确认用于表位标签表达的读码框正确。
请查看以下建议:
请对比仅有细胞的培养板和感染的培养板。与感染的细胞相比,未感染的细胞应表现为过度生长状态,因为转染会抑制生长。如果出现这种情况,应继续每日观察感染细胞是否有其他感染迹象(核肿胀、脱离培养板、病毒出芽以及裂解)。感染动力学可能比预期慢。如果细胞生长未出现抑制现象,您可考虑以下因素:
如果您所有的样品中都有野生型病毒污染,则使用P1病毒储液重新进行空斑实验。应确保选择间隔合适的、occ-空斑。如果您难以对重组空斑和非重组空斑进行区分,可尝试使用一种pBlueBac载体。在琼脂糖覆层时,若在培养基中加入显色底物,则重组空斑为蓝色(想要获取更多信息,请参见使用手册第14页)。
感染动力学可能比预期要慢。继续观察培养板,直至感染后第8-9天。如果未出现空斑,则检查下面各项:
通常使用的MOI在5-10之间。如果加入过多病毒,会导致细胞过早死亡,并使蛋白表达水平降低。
细胞接种过多;我们建议在6孔板的每孔中接种8 x 105个细胞。
是的,这表明空斑上存在吸液问题。琼脂糖覆层“漂浮”,是因为板中的培养基未被全部吸走。将琼脂糖覆盖到细胞上之前,培养板应完全干燥,特别是在将要挑选空斑时。为达到这样的效果,我们通常会将培养板稍微倾斜,用Pasteur移液管沿培养板边缘吸一圈,同时小心不要破坏细胞单层。如果培养板边缘有任何培养基残留(小液滴),则继续吸液。琼脂糖覆层“漂浮”,也可能导致野生型病毒污染。野生型病毒可以迁移到培养板的其他部分,从而污染重组型空斑。野生型病毒比重组型病毒复制得快的多,可迅速超过重组型病毒。
琼脂糖覆层过热。加入琼脂糖覆层后,细胞应仍然保持圆形和健康状态。
有几种原因可导致培养板变蓝:
在打算挑选空斑的那一天,制备含Bluo-gal的DMSO溶液,浓度为20 mg/mL。在每个板中加入50 µL,使用玻璃涂布器在无菌条件下涂布。等待30-60分钟,空斑应变为蓝色。
正常情况下,约5-7天会出现很小的白点,约10天出现1 mm空斑。空斑的大小范围为1 mm至4 mm。
是的,细胞被单个野生型病毒感染后,会以不同速度生成多角体,直到培养瓶中所有的细胞都被感染。细胞中多角体的形成需要3-4天左右,其大小和数量各不相同,直至达到最大能力并发生细胞破裂,从而将微小的病毒颗粒释放到培养基中。
这是同源性重组较差的典型标志。应检查使用的质粒/线性DNA比例。但是,如果存在一些蓝色空斑,则对那些病毒进行扩增并检测它们的蛋白。根据我们的经验,它们应该是正确的,即使其丰度相对较低。
若出现蓝色菌落,则大肠杆菌含有杆粒和质粒,使细胞能在筛选过程中存活。但是,由于未发生转座,所以LacZ基因未被破坏。靶心菌落表示在菌落生长时发生转座。将从混合克隆白色部分中分离得到的克隆重新划线,应该能够得到发生过转座的菌落。
庆大霉素浓度可能过高。尝试降低庆大霉素的浓度至5 µg/mL,并在培养基中加入更多菌落。
仅限研究用途,不可用于诊断操作。