我们已在 Thermo Scientific Nunclon Delta 和 Nunclon Sphera 细胞培养塑料器具及主要竞品上对最常用的细胞系进行了测试，以验证 Nunc 细胞培养塑料器具在细胞培养生物安全柜中的表现。

查找您的细胞系，并亲眼目睹它们如何在 Nunc 细胞培养塑料器具中蓬勃生长。我们将持续添加更多的细胞数据。

细胞系细胞类型数据
A431贴壁细胞、皮肤表皮细胞、上皮细胞Nunclon Delta（2D 培养）
A549贴壁细胞、人肺癌细胞、上皮细胞Nunclon Delta（2D 培养）
Caco-2贴壁细胞、结直肠腺癌细胞Nunclon Delta（2D 培养）
CHO-K1贴壁细胞、人乳腺细胞、上皮细胞Nunclon Delta（2D 培养）
Cos-7贴壁细胞、肾成纤维细胞、SV40 转化细胞Nunclon Delta（2D 培养）
HEK293贴壁细胞、胚胎肾细胞、上皮细胞Nunclon Delta（2D 培养）
HeLa贴壁细胞、宫颈腺癌细胞、上皮细胞Nunclon Delta（2D 培养）
HepG2贴壁细胞、肝细胞、上皮癌细胞Nunclon Delta（2D 培养）
Nunclon Sphera（3D 培养）
HT-29贴壁细胞、人结直肠腺癌细胞、上皮细胞Nunclon Delta（2D 培养）
LNCaP贴壁细胞、结直肠腺癌细胞Nunclon Sphera（3D 培养）
MCF-7贴壁细胞、人乳腺腺癌细胞、上皮细胞Nunclon Delta（2D 培养）
MCF-10A贴壁细胞、中国仓鼠卵巢细胞、上皮样细胞Nunclon Delta（2D 培养）
MDA-MB-231贴壁细胞、人乳腺腺癌细胞、上皮细胞Nunclon Delta（2D 培养）
MDCK贴壁细胞、远端肾小管上皮细胞、正常细胞Nunclon Delta（2D 培养）
NIH3T3贴壁细胞、胚胎成纤维细胞Nunclon Delta（2D 培养）
PC-3贴壁细胞、前列腺细胞、上皮细胞Nunclon Delta（2D 培养）
T47D贴壁细胞、皮肤表皮细胞、上皮细胞Nunclon Sphera（3D 培养）

A431

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 A431 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美： 

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 基因表达
     

形态

brightfield images of A431 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 A431 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 A431 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing A431 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面（进行30次群体倍增）上生长的 A431 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 A431 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 A431 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 A431 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM. n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

基因表达

Bar charts showing gene expression of 2 endogenous genes in A431 cells when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface
关于两种常见内源基因 EGFR（表皮生长因子受体）和 VEFGA（血管内皮生长因子 α）的表达，对在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面（进行至少10次传代倍增）上生长的 A431 细胞进行了细胞健康检测。在 Corning TC 表面上相对于在 Nunclon Delta 表面上生长的细胞的标准化相对基因表达在 y 轴上显示。误差线表示 SEM。n.s = 不显著（基于非配对学生 t 检验）。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

A549

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 A549 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美： 

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • EGFR 活化

形态

brightfield images of A549 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 A549 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 A549 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing A549 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面（进行30次群体倍增）上生长的 A549 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 A549 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 A549 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 A549 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。

EGFR 活化

Western blot image showing location of phospho-EGFR protein when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface and Bar chart showing fold change in phospho-EGFR expression in A549 cells when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

使用表皮生长因子（EGF，200 ng/mL）对在 Nunclon Delta（Nunc）或 Corning® TC（Corning）表面上生长的 A549 细胞以及切换至 Nunclon Delta（S 至 ND）表面的 A549 细胞处理10分钟。使用抗磷酸化 EGFR（Tyr1086）兔多克隆抗体 0.5 μg/mL 对总细胞裂解物（30 mg）进行免疫印迹分析，以了解 EGFR 磷酸化情况。分别使用总 EGFR 和 GAPDH 作为实验和标准化对照。
 

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco IDMD、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。

Caco-2

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 Caco-2 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美： 

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 细胞贴壁

形态

brightfield images of Caco-2 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 Caco-2 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 Caco-2 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing Caco-2 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面（进行30次群体倍增）上生长的 Caco-2 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 Caco-2 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 Caco-2 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 Caco-2 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM. n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。

细胞贴壁

fluorescence microscopy images of Caco-2 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

作为细胞贴壁和生长的延伸，对在 Nunclon Delta（左）和 Corning® TC 表面（中）上生长的 Caco-2 细胞以及切换至 Nunclon Delta（ND）表面（右）的 Caco-2 细胞进行染色后用于紧密连接蛋白 ZO-3，显示为绿色。使用 DAPI 对细胞核进行染色（显示为蓝色）。各表面之间没有观察到形态差异。细胞在6孔板上生长，并在同一表面上进行染色。使用 EVOS M5000 成像系统在20倍放大条件下拍摄图片，并采用相同的高宽比进行剪切以获得更好的可视化效果。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、20% Gibco FBS 和 0.5% 青霉素链霉素。

CHO-K1

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 CHO-K1 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美： 

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 转染效率

形态

brightfield images of CHO-K1 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 CHO-K1 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 CHO-K1 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。

细胞活力和生长

Bar charts showing CHO-K1 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面（进行30次群体倍增）上生长的 CHO-K1 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 CHO-K1 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 CHO-K1 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 CHO-K1 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。

转染效率

Brightfield and fluorescence images showing CHO-K1 cells and mCherry fluorescent protein localization
CHO-K1 细胞接种于 Nunclon Delta 和 Corning® TC 表面（6孔板）并且 mCherry 使用 Neon 转染系统进行转染。转染后24小时采集活细胞的代表性图片。
flow cytometry histograms of fluorescently stained CHO-K1 cells grown on Nunclon Delta surface or on Corning TC surface

通过流式细胞分析评估 mCherry 在 CHO-K1 细胞中的转染效率。每个样品采集10,000个事件。n=2。误差线代表 SEM。UT - 未转染细胞，T - 转染细胞。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

Cos-7

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 Cos-7 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美： 

  • 形态
  • 细胞活力和生长

形态

rightfield images of Cos-7 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 Cos-7 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 Cos-7 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing Cos-7 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面（进行30次群体倍增）上生长的 Cos-7 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 Cos-7 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 Cos-7 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 Cos-7 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

HEK293

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 HEK293 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美：

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 转染效率
     

形态

brightfield images of HEK293 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 表面（中）上生长的 HEK293 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 HEK293 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。

细胞活力和生长

bar charts showing HEK293 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面（进行30次群体倍增）上生长的 HEK293 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 HEK293 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 HEK293 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 HEK293 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM. n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

转染效率

fluorescence images of HEK293 cells grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

HEK293 细胞接种于 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面并且 mCherry 使用 Lipofectamine 3000 转染试剂对其进行转染的。转染后24小时采集活细胞图片。

flow cytometry histograms of fluorescently stained HEK293 cells grown on Nunclon Delta surface or on Corning TC surface

通过流式细胞分析评估 mCherry 在 HEK293 细胞中的转染效率（如上所述）。每个样品采集10,000个事件。n = 2。误差线代表 SEM。UT – 未转染细胞，T – 转染细胞。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

HeLa

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 HeLa 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美： 

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 转染效率
     

形态

brightfield images of HeLa cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 HeLa 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 HeLa 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing HeLa cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面（进行30次群体倍增）上生长的 HeLa 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 HeLa 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 HeLa 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 HeLa 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

转染效率

fluorescence images of HeLa cells grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

HeLa 细胞接种于 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面（6孔板），并且 mCherry 使用 Lipofectamine 3000 转染试剂对其进行转染。转染后24小时采集活细胞图片。

flow cytometry histograms of fluorescently stained HeLa cells grown on Nunclon Delta surface or on Corning TC surface

通过流式细胞分析评估 mCherry 在 HeLa 细胞中的转染效率（如上所述）。每个样品采集10,000个事件。n = 2。误差线代表 SEM。UT – 未转染细胞，T – 转染细胞。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

HepG2

Nunclon Delta（2D 培养）

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 HepG2 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美： 

形态

brightfield images of HepG2 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 HepG2 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 HepG2 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing HepG2 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（进行30次群体倍增）上生长的 HepG2 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 HepG2 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 HepG2 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 HepG2 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

基因表达

Bar charts showing gene expression of 2 endogenous genes in HepG2 cells when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface
关于两种常见内源基因 SLCO2B1（溶质载体有机阴离子转运蛋白家族成员 2B1）和 ABCC6（多药耐药性相关蛋白6）的表达，对在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面生长达到至少10次传代倍增的 HepG2 细胞进行了细胞健康检测。在 Corning TC 表面上相对于在 Nunclon Delta 表面上生长的细胞的标准化相对基因表达在 y 轴上显示。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

HT-29

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 HT-29 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美：

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 蛋白表达
     

形态

brightfield images of HT-29 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 Ht29 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 Ht29 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing HT-29 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（进行30次群体倍增）上生长的 HT-29 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 HT-29 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 HT-29 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 HT-29 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

蛋白表达

Fluorescence microscopy images of HT-29 cells stained for ZO-3 and F-actin when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface and Western blot image showing location of ZO-3 protein in HT-29 cells when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 将在 Nunclon Delta（左图）和 Corning® TC 表面（右图）6孔板上生长的 HT-29 细胞固定在板上，使用 ABfinity 抗 ZO-3 兔重组寡克隆抗体（5 mg/mL）进行连接蛋白 ZO-3 染色，并使用山羊抗兔 IgG（H+L）Superclonal 二抗 Alexa Fluor 488 偶联物（1:2,000）进行检测。图 a 显示了染色后用于 ZO-3 蛋白（绿色）检测和定位的代表性细胞，图 b 表示使用 Alexa Fluor 555 罗丹明鬼笔环肽（1:300）进行细胞骨架 F-肌动蛋白染色。图 c 是使用Hoechst 33342（1:2,000）对细胞核（蓝色）进行染色。图 d 是图 a、b 和 c 的复合图片，表现的是 ZO-3 的膜定位。比例尺 = 100 μm。(B) 作为细胞生长和汇合度的延伸，通过在第2天和第6天对在 100 mm 培养皿内的 Nunclon Delta（Nunc）或 Corning® TC 表面（Corning）上生长的 HT-29 细胞以及切换至 Nunclon Delta 表面（S 至 ND）的 HT-29 细胞进行免疫印迹分析，以进一步检测 ZO-3 表达。使用 1 μg/mL 的 ZO-3 抗体对印迹进行探针探测。在所有泳道中观察到一条对应于 ZO-3 的 140 kDa 条带。此外，在融合细胞中还特异性表达了一条对应于 ZO-3 同源异构体的 100 kDa 条带（6天）。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco IMDM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。

Nunclon Sphera（3D 培养）

在 Nunc Nunclon Sphera 表面上生长的 HepG2 细胞（结合使用了 Gibco 培养基 和 Gibco FBS ）经验证可生成一致和高质量的球状体。

在与主要供应商的并行比较中，Nunclon Sphera 产生了高质量的 HepG2 球状体，而其他供应商的产品产生了不需要的卫星菌落。

Brightfield microscope views of the spheroids that result from seeding a range of HepG2 cells from 312 to 5000

在 Nunclon Sphera 和 Corning® ULA U 形底表面上的球状体形成情况：HepG2 细胞以各自密度接种于 Nunclon Sphera 和 Corning® ULA™ U 形底微孔板上，用于生成球状体。在第6天，使用 EVOS 成像系统在4倍物镜下拍摄球状体的明场图片。图中显示了代表性图片。在 Sphera 表面上形成的球状体没有卫星菌落，而在 Corning® ULA™ 微孔板上生长的球状体中发现更高接种密度的卫星菌落。比例尺 = 1,000 μm。

请参见 HepG2 球状体生成方案

LNCaP

Nunclon Sphera（3D 培养）

在 Nunc Nunclon Sphera 表面上生长的 LNCaP 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）经验证可生成一致和高质量的球状体。

在与主要供应商的并行比较中，Nunclon Sphera 产生了高质量的 LNCaP 球状体，而其他供应商的产品产生了不需要的卫星菌落。

Brightfield microscope views of the spheroids that result from seeding a range of LNCaP cells from 150 to 10000

在 Nunclon Sphera 和 Corning® ULA U 形底表面中的球状体形成情况。LNCaP 细胞以各自密度接种于 Nunclon Sphera 和 Corning® ULA U 形底微孔板上，用于生成球状体。在第4天，使用 EVOS 成像系统在4倍物镜下拍摄球状体的明场图片。图中显示了代表性图片。在 Sphera 表面上形成的球状体没有卫星菌落，而在 Corning® ULA 微孔板上生长的球状体中发现更高接种密度的卫星菌落。比例尺 = 650 μm

请参见 LNCaP 球状体生成方案

MCF-7

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 MCF-7 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美：

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 表面标志物表达
     

形态

brightfield images of MCF-7 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 MCF-7 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 MCF-7 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing MCF-7 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（进行30次群体倍增）上生长的 MCF-7 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 MCF-7 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 MCF-7 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 MCF-7 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

表面标志物表达

关于内源性受体酪氨酸蛋白激酶 ErbB2 的表达，使用流式细胞分析对在 Nunclon Delta（左）或 Corning TC 表面（中）上生长的 MCF-7 细胞以及切换至 Nunclon Delta 表面（右）的 MCF-7 细胞进行了分析。IgG1 用作同种型对照。使用不同生长表面时未观察到 ErbB2 的相对表达存在差异。样品在 Invitrogen Attune NxT 流式细胞仪上进行两次重复实验。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco MEM、10% Gibco FBS、1% 青霉素链霉素和 0.01mg/ml 胰岛素。

MCF-10A

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 MCF-10A 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美：

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 基因表达
     

形态

brightfield images of MCF-10A cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 MCF-10A 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 MCF-10A 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。

细胞活力和生长

Bar charts showing MCF-10A cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（进行30次群体倍增）上生长的 MCF-10A 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 MCF-10A 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 MCF-10A 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 MCF-10A 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。

基因表达

Bar chart showing gene expression of 2 endogenous genes in MCF-10A cells when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

关于细胞表面相关 MUC1（黏蛋白-1）的表达，对在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面上生长达到至少10次传代倍增的 MCF-10A 细胞进行 qPCR 检测。使用 RiboPure RNA 纯化试剂盒分离 RNA，使用含 RNase 抑制剂的高容量 cDNA 逆转录试剂盒制备 cDNA，并使用 TaqMan® Fast Advanced 预混液在定制 TaqMan® 阵列板中进行 qPCR。在 Corning TC 表面上相对于在 Nunclon Delta 表面上生长的细胞的标准化相对基因表达绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：复溶 Gibco 培养基 171、100 ng/ml 霍乱毒素和 1% 青霉素链霉素。  

MDA-MB-231

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 MDA-MB-231 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美：

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 表面标志物表达
     

形态

brightfield images of MDA-MB-231 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 MDA-MB-231 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 MDA-MB-231 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing MDA-MB-231 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（进行30次群体倍增）上生长的 MDA-MB-231 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 MDA-MB-231 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 MDA-MB-231 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 MDA-MB-231 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

表面标志物表达

Flow cytometry histograms showing magnitude of ICAM-1 and CD44 signal in MDA-MB-231 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

关于以下两种内源性表面标志蛋白的表达，对在 Nunclon Delta 或 Corning® TC 表面生长达到25次倍增的 MDA-MB-231 细胞以及切换到 Nunclon Delta（ND）表面进行10次倍增的 MDA-MB-231 细胞进行评估：ICAM-1（首行，0.25 μg/测试）和 CD44（末行，0.06 μg/测试），采用流式细胞分析进行。为每种情况收集10,000个事件。未观察到不同生长表面的表面标志物表达存在差异。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

MDCK

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 MDCK 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美：

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 相对基因表达
     

形态

brightfield images of MDCK cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 MDCK 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 MDCK 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing MDCK cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（进行30次群体倍增）上生长的 MDCK 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 MDCK 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 MDCK 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 MDCK 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

相对基因表达

Bar charts showing fold change in gene expression for CDH-1 and MUC1 in MDCK cells when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

作为细胞贴壁的延伸，对在 Nunclon Delta 或 Corning TC 表面上生长达到至少10次传代倍增的 MDCK 细胞进行分析，以检测内源性表达的一种细胞黏附标志物 CDH-1（钙黏着蛋白-1）的基因表达。还通过 qPCR 检测特有的内源基因 MUC1（黏蛋白-1）在细胞内的表达。使用 RiboPure RNA 纯化试剂盒分离 RNA，使用 cDNA 制备试剂盒制备 cDNA，并使用 TaqMan® Assay 预混液在定制阵列板中进行 qPCR。在 Corning TC 表面上相对于在 Nunclon Delta 表面上生长的细胞的标准化相对基因表达绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s = 不显著（基于非配对学生 t 检验）。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

NIH3T3

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 NIH3T3 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美：

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 细胞划痕实验
     

形态

brightfield images of NIH3T3 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 NIH3T3 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 NIH3T3 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

Bar charts showing NIH3T3 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（进行30次群体倍增）上生长的 NIH3T3 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 NIH3T3 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 NIH3T3 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 NIH3T3 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

细胞划痕实验

brightfield images of NIH3T3 cells grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface over time following wound introduction and Line graph showing NIH3T3 percent wound area over time when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

细胞划痕实验。(A) 通过在 Nunclon Delta 或 Corning TC 表面上生长的 NIH3T3 细胞在各自表面上在血清饥饿条件下接受细胞划痕实验的能力来评估其细胞健康状况。(B) 对 A 中所示图片进行定量分析。使用 ImageJ 分析图片。在 y 轴上绘制划痕区域随时间变化的百分比。误差线代表 SEM。从每个条件的3个单独字段收集数据。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。

 

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

PC-3

对在 Nunc Nunclon Delta 表面上生长的 PC-3 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）进行了测试，结果表明细胞生长情况一致。

对细胞培养物与一款主要竞品进行了并行测试，结果证明它们在以下方面可媲美：

  • 形态
  • 细胞活力和生长
  • 转染效率
     

形态

brightfield images of PC-3 cells grown on Nunclon Delta surface, on Corning TC surface, or on Nunclon Delta surface after previous growth on Corning TC surface

以上图片是在 Nunclon Delta（左）和 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（中）上生长的 PC-3 细胞及切换至 Nunclon Delta（ND）表面进行10次传代倍增（右）的 PC-3 细胞的代表性明场图片。使用 EVOS 细胞成像系统在10倍放大条件下拍摄图片。
 

细胞活力和生长

bar charts showing PC-3 cell viability data and population data when grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

(A) 在 Nunclon Delta 或 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面（进行30次群体倍增）上生长的 PC-3 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 PC-3 细胞的平均细胞活力绘制于 y 轴上。(B) 在 Nunclon Delta 和 Corning TC 处理表面（进行30次群体倍增）上增殖的 PC-3 细胞及切换至 Nunclon Delta TC 处理表面（进行10次传代倍增）的 PC-3 细胞的平均群体倍增时间绘制于 y 轴上。误差线表示 SEM。n.s.= 不显著（基于非配对学生 t 检验）。
 

转染效率

fluorescence images of HeLa cells grown on Nunclon Delta or on Corning TC surface

PC-3 细胞接种于 Nunclon Delta 或 Corning® 经组织培养（TC）处理的表面，并且 mCherry 使用 Lipofectamine 3000 转染试剂对其进行转染。转染后24小时采集活细胞图片。

flow cytometry histograms of fluorescently stained HeLa cells grown on Nunclon Delta surface or on Corning TC surface

通过流式细胞分析评估 mCherry 在 PC-3 细胞中的转染效率（如上所述）。每个样品采集10,000个事件。n = 2。误差线代表 SEM。UT – 未转染细胞，T – 转染细胞。

对于上述 Nunclon Delta 表面与 Corning® TC 表面实验，使用了如下细胞培养基和试剂配方：Gibco DMEM、10% Gibco FBS 和 1% 青霉素链霉素。  

T47D

Nunclon Sphera（3D 培养）

在 Nunc Nunclon Sphera 表面上生长的 T47D 细胞（结合使用了 Gibco 培养基和 Gibco FBS）经验证可生成一致和高质量的球状体。

在与主要供应商的并行比较中，Nunclon Sphera 产生了高质量的 T47D 球状体，而其他供应商的产品产生了不需要的卫星菌落。

Brightfield microscope views of the spheroids that result from seeding a range of TD47 cells from 500 to 10000

在 Nunclon Sphera 和 Corning® ULA™ U 形底表面上的球状体形成情况：T47D 细胞以各自密度接种于 Nunclon Sphera 和 Corning® ULA™ U 形底板上，用于生成球状体。在第6天，使用 EVOS M5000 成像系统在4倍物镜下拍摄球状体的明场图片。图中显示了代表性图片。在 Sphera 表面上形成的球状体没有卫星菌落，而在细胞接种数2,000及以上的情况下，在 Corning® ULA™ 微孔板上生长的球状体中发现了卫星菌落，在 ~75% 的时间内均是如此。重复实验至少3次。比例尺 = 800 μm。

请参见 T47D 球状体生成方案
查看其他细胞系的更多 3D 细胞培养比较

Corning 是 Corning Inc. 的注册商标 

仅供科研使用，不可用于诊断目的。