介绍

Lipofectamine RNAiMAX 是一种专为将 siRNA 和 Stealth™ RNAi 双链体转染至真核细胞而开发的专利配方。Lipofectamine RNAiMAX 具有以下优势:

  • 在许多细胞类型中具有较高的转染效率,以尽可能减少来自未转染细胞的本底表达并尽可能实现敲低。
  • 细胞毒性极轻微,以减少非特异性效应和细胞应激。
  • 通常只需低浓度的 RNAi 双链体即可获得较高敲低水平,从而进一步尽可能减少非特异性效应。
  • 较佳转染活性的峰较宽且细胞毒性极轻微,在此情况下尽管存在细胞密度差异、轻微移液不准确和其他差异,但仍可达到较高敲低水平。

转染的重要指导原则

  • 反向转染和正向转染方案(见下文)可用于大多数检测细胞系。细胞类型特异性转染方案可在 www.lifetechnologies.com/RNAi 获取,也可通过技术服务部获取。
  • 我们建议使用 Opti-MEM I 减血清培养基(货号 31985-062)稀释 RNAi 双链体和 Lipofectamine RNAiMAX,然后形成复合物。
  • 请勿在转染时向培养基中添加抗生素,因为这会导致细胞死亡。
  • 检测无血清培养基与 Lipofectamine RNAiMAX 的兼容性。
  • 为评估转染效率,我们建议使用 KIF11 Stealth™ Select RNAi,如评估转染效率中所述。
  • 使用 10 nM RNAi 双链体和指定程序作为起点;如优化转染中所述优化转染。


质量控制

用血琼脂平板、沙氏葡萄糖琼脂平板和液体巯基乙酸盐培养基检测 Lipofectamine RNAiMAX 是否不存在微生物污染,检测其是否不存在 RNase 活性,并通过将 Stealth™ RNAi 和适当对照品转染至报告基因细胞系对其进行功能检测。

转染程序

注:用 Lipofectamine RNAiMAX 进行 DNA 和 RNA 共转染(参见本部分底部)

反向转染

使用此程序在 24 孔规格板中将 Stealth™ RNAi 或 siRNA 反向转染至哺乳动物细胞中(对于其他规格板,请参见“扩大或缩小转染规模”)。在反向转染中,在孔内制备复合物,然后添加细胞和培养基。反向转染的速度快于正向转染,是用于高通量转染的所选方法。如优化转染中所述优化转染,特别是首次进行哺乳动物细胞系转染时。所有用量和体积均按每孔给出。

  1. 对于每个待转染的孔,制备 RNAi 双链体-Lipofectamine RNAiMAX 复合物,如下所示。
    • 在组织培养板孔中,用 100 μL 不含血清的 Opti-MEM I 培养基稀释 6 pmol RNAi 双链体。轻轻混匀。
    • 使用前轻轻混匀 Lipofectamine RNAiMAX,然后向每个含有稀释 RNAi 分子的孔中加入 1 μL Lipofectamine RNAiMAX。轻轻混匀并在室温下孵育 10-20 分钟。



  2. 用不含抗生素的完全生长培养基稀释细胞,使 500 μL 培养基含有适当数量的细胞,以使汇合度在铺板后 24 小时达到 30-50%。对于悬浮细胞,使用 20,000-50,000 个细胞/孔的密度。

  3. 向含 RNAi 双链体 - Lipofectamine RNAiMAX 复合物的每个孔中添加 500 μL 稀释细胞。这使得最终体积达到 600 μL,最终 RNA 浓度达到 10 nM。通过来回摇动平板轻轻混匀。

  4. 在 CO2 培养箱中于 37°C 下孵育细胞 24-72 小时,直至您准备好检测基因敲低效果。



评估转染效率

为在定性分析方面评估转染效率,我们建议使用 KIF11 Stealth™ Select RNAi(可通过以下网址获取:www.lifetechnologies.com/rnaiexpress);对于人类细胞,寡核苷酸 HSS105842 是良好选择)。由于有丝分裂停滞,KIF11/Eg5 被敲低的贴壁细胞在 24 小时后表现出“变圆”表型(Weil, D. 等人,Biotechniques (2002),33:1244-1248);生长缓慢的细胞可能需要 72 小时才能显示圆形表型。此外,还可在 48-72 小时后检测生长抑制情况。

注:BLOCK-iT™ 荧光寡核苷酸(货号 2013)经优化可与 Lipofectamine™ 2000 配合使用,不建议用于 Lipofectamine RNAiMAX。

正向转染

使用此程序在 24 孔规格板中将 Stealth™ RNAi 或 siRNA 正向转染至哺乳动物细胞中(对于其他规格板,请参见“扩大或缩小转染规模”)。在正向转染中,将细胞铺板于孔中,转染混合物通常在次日制备并添加。如优化转染中所述优化转染,特别是首次进行哺乳动物细胞系转染时。所有用量和体积均按每孔给出。

注:对于某些细胞系(例如 MCF-7 或 HepG2),我们建议进行反向转染。

  1. 转染前一天,将 500 μL 的细胞铺板于不含抗生素的生长培养基中,使得转染时的汇合度达到 30-50%。

  2. 对于每个待转染的孔,制备 RNAi 双链体-Lipofectamine RNAiMAX 复合物,如下所示:
    • 用 50 μL 不含血清的 Opti-MEMI 减血清培养基稀释 6 pmol RNAi 双链体。轻轻混匀。
    • 使用前轻轻混匀 Lipofectamine RNAiMAX,然后取 1 μL 在 50 μL Opti-MEM I 减血清培养基中稀释。轻轻混匀。
    • 将稀释的 RNAi 双链体与稀释的 Lipofectamine RNAiMAX 混合。轻轻混匀并在室温下孵育 10-20 分钟。



  3. 将 RNAi 双链体-Lipofectamine RNAiMAX 复合物添加至含有细胞的每个孔内。这使得最终体积达到 600 μL,最终 RNA 浓度达到 10 nM。通过来回摇动平板轻轻混匀。

  4. 在 CO2 培养箱中于 37°C 下孵育细胞 24-48 小时,直至您准备好检测基因敲低效果。培养基可在 4-6 小时后更换。



注:用 Lipofectamine RNAiMAX 进行 DNA 和 RNA 共转染

对于将质粒 DNA 和 Stealth™ RNAi 或 siRNA 共转染至哺乳动物细胞,我们建议使用 Lipofectamine 2000(货号 11668-027),其在质粒转染方面有卓越的效果。如果您想要使用 Lipofectamine RNAiMAX 进行共转染,请进行反向转染,并进行以下调整:

  1a: 将 20 ng(对于 24 孔规格板)质粒 DNA 添加至稀释的 RNAi 双链体中。

  2:   添加细胞,使其汇合度在铺板后 24 小时达到 80-100%。

优化转染

为获得极高的转染效率和较低的非特异性效应,通过改变 RNAi 双链体和 Lipofectamine RNAiMAX 浓度来优化转染条件。对于 24 孔规格板,检测 0.6-30 pmol RNAi 双链体(最终浓度 1-50 nM)和 0.5-1.5 μL Lipofectamine RNAiMAX。对于延长时程实验(> 72 小时),考虑细胞密度为汇合度在铺板后 24 小时达到 10-20%。

注:所需的 RNAi 双链体浓度取决于双链体的有效性。

扩大或缩小转染规模

为在不同尺寸的组织培养容器中转染细胞,采用与相对表面积成比例的方式改变 Lipofectamine RNAiMAX、RNAi 双链体、细胞和培养基的用量,如表中所示。

培养容器相对表面积铺板培养基体积稀释培养基反向转染稀释培养基正向转染RNAi (pmol)RNAi (nM)
Lipofectamine RNAiMAX2
96 孔0.2
100 μL
20 μL2 x 10 μL
0.12-6

1-50
0.1-0.3 μL
48 孔0.4200 μL40 μL2 x 20 μL0.24-121-500.2-0.6 μL

24 孔
1500 μL100 μL
2 x 50 μL
0.6-301-500.5-1.5 μL
6 孔52.5 mL500 μL2 x 250 μL3-1501-502.5-7.5 μL
60 mm105 mL1 mL2 x 500 μL6-3001-505-15 μL
100 mm3010 mL2 mL2 x 1 mL12-6001-5015-35 μL


1  不同生产商的表面积可能不同。

2  如果 Lipofectamine RNAiMAX 的体积太小而无法准确分配,且不能合并稀释液,则使用 Opti-MEM I 减血清培养基将 Lipofectamine RNAiMAX 预稀释 10 倍,再分配 10 倍相应量(每孔应至少 1.0 μL)。丢弃所有未使用的已稀释 Lipofectamine RNAiMAX。

13778.PPS   2006 年 8 月 4 日