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Qubit 단백질 어세이 키트는 단백질 정량을 용이하게 하는 동시에 정확한 정량을 제공하도록 설계되었습니다. Qubit 단백질 어세이는 10-15분의 실온 인큐베이션만 필요하므로 긴 인큐베이션 기간 또는 온도를 높일 필요가 없습니다.
두 키트를 함께 사용할 경우, 중첩 농도 범위 문제가 해결되어 12.5 μg/mL-20mg/mL 사이의 초기 시료 농도에 대해 정확한 결과를 제공하며 단백질간 변동이 낮게 나타납니다. 환원 시약(DTT, β-mercaptoethanol), 염, 자유 뉴클레오티드, 아미노산, 용매, DNA, 계면활성제(Qubit 단백질 BR 어세이에 포함) 같은 일반 오염물질은 어세이에서 허용가능합니다. 다른 오염 물질은 이 절차를 약간 수정해야 할 수도 있습니다.
참고: Qubit 단백질 어세이는 Qubit 4 및 Flex 형광측정기에서 모두 실행할 수 있지만 Qubit 단백질 BR 어세이는 Qubit 4 모델에서만 실행할 수 있습니다.
특징 | ||
적합한 용도 | 광범위한 단백질 농도 및 유형 | <100µg/mL의 희석 시료 테스트 |
호환 플랫폼 | Qubit 4 형광측정기 | Qubit Flex, Qubit 4 형광측정기* |
특징 | 2점 표준 곡선을 사용한 간단하고 빠른 분석 | 3점 표준 곡선을 사용한 간단하고 빠른 분석 |
필요한 시료 부피 | 10 또는 20µL | 1–20 μL |
호환성 | 계면활성제 | 환원제(예: TCEP, DTT) |
비호환성 | 글리신 | 계면활성제(예: SDS, Tween 20, Triton X-100) |
초기 시료 범위 | 100µg/mL-20mg/mL | 12.5µg/mL-5mg/mL |
정량 범위 | 1-400µg | 0.25-5µg |
카탈로그 번호: |
*Qubit 단백질 어세이는 이전 Qubit 모델, Qubit 2 및 Qubit 3에서도 지원됩니다.
Bradford 어세이와 같은 표준 어세이와 비교할 때 Qubit 단백질 어세이의 넓은 동적 범위를 사용하여 대부분의 시료를 용매없이 사용할 수 있습니다(희석하지 않음). 이를 통해 기존 단백질 정량 방법에 수반되는 추측 및 희석 단계가 필요하지 않습니다.
Qubit 단백질 어세이는 Bradford 어세이와 같은 표준 단백질 정량 어세이보다 훨씬 넓은 동적 범위를 제공합니다. Qubit 단백질 어세이는 12.5µg/mL까지 단백질을 정확하게 정량할 수 있으며, Qubit 단백질 BR 어세이(Qubit 4 형광측정기와 호환)는 최대 20,000µg/mL의 정량 범위를 제공합니다.
Qubit 단백질 어세이는 일반적으로 단백질 정량을 위해 5-7점 표준 곡선이 필요한 기존 분석법과는 달리, 2개 또는 3개의 표준만 준비하므로 쉽게 수행할 수 있습니다.
단백질은 구성 및 구조에서 다양합니다. 아미노산 서열, 등전점(pI), 2차 구조 및 측면 사슬 또는 보결 분자단의 차이로 인해 정량에 차이가 있을 수 있습니다. Qubit 단백질 BR 어세이는 Bradford 어세이와 같은 기존 분석과 비교하여 낮은 단백질-단백질 가변성으로 정확한 단백질 정량을 제공합니다.
단백질 발현을 연구하기 위해 웨스턴 블랏 분석을 위한 전기영동 젤(gel)을 로딩할 때 정확한 단백질 로딩은 필수적입니다. 이 실험에서는 다섯 개의 서로 다른 세포 용해물에 대해 10-µg 단백질 로드(load)를 측정하기 위해 Qubit 단백질 BR 어세이 및 기존 Bradford 단백질 어세이를 사용했습니다. iBright FL 1500 이미징 시스템에서 총 단백질 레인 로드(total protein lane loads)를 추정하기 위해 No-Stain Protein Label Reagent가 사용되었습니다. Qubit 단백질 BR 어세이는 로드(load)간 변동 계수(CV) 11%로 용해물의 단백질 농도를 정확하게 측정했지만, Bradford 어세이는 CV가 28%로 높은 가변성을 보였습니다.
오염물질 | Qubit 단백질 BR 어세이 | Qubit 단백질 어세이 |
시료 내 호환 농도 | ||
β-Mercaptoethanol | 1mM | 10mM |
Acetonitrile | 20% |
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Ammonium sulfate | 200mM | 50mM* |
Bicine | 100mM |
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Borate (50 mM pH 8.5) | 무용매 |
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B-PER reagent | 무용매 |
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CHAPS | 5% |
|
Carbonate-bicarbonate | 무용매 |
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DTT | 5mM | 10mM* |
DMSO | 10% |
|
EDTA | 50mM | 10mM |
Glucose | 1M |
|
Glycerol | 10% | 10% * |
Guanidine-HCl | 4M |
|
Imidazole | 200mM | 12.5mM |
I-PER | 무용매 |
|
Mem-PER | 무용매 |
|
MES | 125mM |
|
MOPS | 100mM |
|
M-PER | 무용매 |
|
Sodium acetate | 100mM |
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Sodium azide |
| 10mM |
Sodium chloride | 5M | 200mM* |
NE-PER (CER) | 무용매 |
|
NE-PER (NER) | 무용매 |
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NP-40 | 5% | Ø |
Phosphate-buffer saline (PBS), pH 7.4 | 무용매 | 10mM KPO4, 150mM NaCl* |
Potassium phosphate, pH 7.4 |
| 5mM |
PMSF | 1mM |
|
RIPA | 무용매 |
|
SDS | 5% | 0.1% |
Sucrose | 20% | 500mM |
T-PER | 무용매 |
|
트리신(Tricine) | 50mM |
|
Tris-buffer saline (TBS) | 무용매 |
|
Tris-Glycine, pH 8.0 | Ø |
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Tris-Glycine SDS, pH 8.3 | Ø |
|
Tris-HCl | 500mM |
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Tris-HEPES SDS, pH 8.0 | 무용매 |
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Triton X-100 | 5% | Ø |
Tween 20 | 3% | Ø |
Urea | 3M |
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Y-Per | Ø |
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GPCR Extraction & Stabilization Reagent | 1:2 |
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Cell Surface Protein Isolation Kit | 무용매 |
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*허용 가능한 결과이지만 표준 곡선이 약간 왜곡됩니다. 최상의 결과를 위해 동일한 양의 오염물질을 표준 시료에 첨가합니다.
방법. Qubit 단백질 BR 어세이 및 Qubit 단백질 어세이는 일반적으로 사용되는 버퍼과 오염물이 포함된 1,000µg/mL BSA 시료와 함께 지침에 따라 수행되었습니다. 어세이는 3회 수행되었으며, RFU 값은 0.9% NaCl, 0.05% NaN3의 BSA 값과 비교되었습니다. 물질의 존재로 인한 단백질 농도 추정의 오차가 10% 미만인 경우 지정된 농도의 시험된 물질과 호환되는 것으로 간주하였습니다. 나열된 농도는 단백질 시료의 실제 농도를 나타냅니다. Ø는 테스트한 최저 농도에서는 호환되지 않는 화합물을 나타냅니다. 빈 필드는 해당 어세이로 화합물을 테스트하지 않은 것을 나타냅니다.
버퍼 | 조성 |
Sodium carbonate-bicarbonate, pH 9.4 | 0.2 M sodium carbonate-bicarbonate, pH 9.4 |
PBS(Phosphate-buffered saline) | 100mm sodium phosphate, 150mm NaCl, pH 7.2 |
RIPA buffer | 25mM Tris, 150mM NaCl, 1% DOC, 1% NP-40, 0.1% SDS, pH 7.6 |
TBS(Tris-buffered saline) | 25mM Tris, 150mM NaCl, pH 7.4 |
Tris-Glycine, pH 8.0 | 25mM Tris, 192mM glycine, pH 8.0 |
Tris-glycine-SDS, pH 8.3 | 25mM Tris, 192mM glycine, 0.1% SDS, pH 8.3 |
Tris-HEPES-SDS | 100mM Tris, 100mM HEPES, 3mM SDS |
For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.