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Qubit 蛋白质检测试剂盒旨在简化并提供准确的蛋白质定量。Qubit 蛋白质检测仅需 10-15 分钟的室温培养,无需长时间培养或暴露于高温下。
这两种试剂盒拥有重叠的浓度范围,可在 12.5 μg/mL 到 20 mg/mL 的初始样品浓度内保持准确,且不同的蛋白质间的定量检测变异较小。这些检测可很好地兼容还原性试剂(DTT、β-巯基乙醇)、盐、游离核苷酸、氨基酸、溶剂、DNA 以及洗涤剂(Qubit 蛋白质 BR 检测中)等常见污染物。其他污染物可能需要略微改动检测程序。
注意:虽然 Qubit 蛋白质检测可在 Qubit 4 和 Flex 荧光计上运行,但 Qubit 蛋白质 BR 检测试剂盒仅可在 Qubit 4 上运行。
特点 | ||
适用于 | 各种蛋白质浓度和类型 | 测试稀释样本,<100 μg/mL |
兼容平台 | Qubit 4 荧光计 | Qubit Flex、Qubit 4 荧光计* |
特点 | 使用 2 点标准曲线即可简单、快速测定 | 使用 3 点标准曲线即可简单、快速测定 |
所需样本体积 | 10 或 20 µL | 1-20 µL |
兼容试剂 | 去垢剂 | 还原剂(例如 TCEP、DTT) |
不兼容试剂 | 甘氨酸 | 洗涤剂(如 SDS、吐温 20、Triton X-100) |
初始样本范围 | 100 µg/mL 至 20 mg/mL | 12.5 µg/mL 至 5 mg/mL |
定量范围 | 1-400 µg | 0.25-5 µg |
货编号 |
* Qubit 蛋白质检测支持旧型号 Qubit、Qubit 2 和 Qubit 3。
与 Bradford 检测等标准检测相比,Qubit 蛋白质检测的动态范围较大,且可直接使用大多数纯(未稀释)样本。这样就消除了传统蛋白质定量方法中的估算和稀释步骤。
Qubit 蛋白质检测提供的动态范围比 Bradford 检测等标准蛋白质检测更大。Qubit 蛋白质检测可精准定量浓度最低 12.5 μg/mL 的蛋白质,而 Qubit 蛋白质 BR 检测(兼容 Qubit 4 荧光计)的定量范围高达 20,000 μg/mL。
Qubit 蛋白质检测简单易行,仅需 2-3 个标准品即可轻松设置,而传统检测方法通常要 5-7 点的标准曲线才能定量蛋白。
蛋白质的组成和结构千变万化。氨基酸序列、等电点 (pI)、二级结构和侧链或辅基的差异都可导致定量数值的变化。与 Bradford 检测等传统检测相比,Qubit 蛋白质 BR 检测可以提供精准的蛋白质定量,且结果对不同的蛋白质来说变异较小。
当加载用于蛋白免疫印迹分析的电泳凝胶以研究蛋白表达时,准确的蛋白负荷至关重要。本试验中使用 Qubit 蛋白质 BR 检测和传统的 Bradford 蛋白质检测测量了五种不同细胞裂解物的 10 μg 蛋白负荷。非染色蛋白质标记试剂用于估算 iBright FL 1500 成像系统上的总蛋白泳道负荷。Qubit 蛋白质 BR 检测精准测定了裂解物的蛋白质浓度,且负荷间 变异系数 (CV) 为 11% 变异,而 Bradford 检测结果的变异性更高,其 CV 为 28%。
污染物 | Qubit 蛋白质 BR 检测 | Qubit 蛋白质检测 |
样本中的兼容浓度 | ||
β-巯基乙醇 | 1 mM | 10 mM |
乙腈 | 20% |
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硫酸铵 | 200 mM | 50 mM* |
Bicine | 100 mM |
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硼酸盐 (50 mM pH 8.5) | 纯 |
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B-PER 试剂 | 纯 |
|
CHAPS | 5% |
|
碳酸盐-碳酸氢盐 | 纯 |
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DTT | 5 mM | 10 mM* |
二甲基亚砜 | 10% |
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EDTA | 50 mM | 10 mM |
葡萄糖 | 1 M |
|
甘油 | 10% | 10%* |
盐酸胍 | 4 M |
|
咪唑 | 200 mM | 12.5 mM |
I-PER | 纯 |
|
Mem-PER | 纯 |
|
MES | 125 mM |
|
MOPS | 100 mM |
|
M-PER | 纯 |
|
醋酸钠 | 100 mM |
|
叠氮化钠 |
| 10 mM |
氯化钠 | 5 M | 200 mM* |
NE-PER (CER) | 纯 |
|
NE-PER (NER) | 纯 |
|
NP-40 | 5% | Ø |
磷酸盐缓冲液 (PBS),pH 7.4 | 纯 | 10 mM KPO4,150 mM NaCl* |
磷酸钾,pH 7.4 |
| 5 mM |
PMSF | 1 mM |
|
RIPA | 纯 |
|
SDS | 5% | 0.1%* |
蔗糖 | 20% | 500 mM |
T-PER | 纯 |
|
Tricine 体系 | 50 mM |
|
Tris-缓冲盐水 (TBS) | 纯 |
|
Tris-甘氨酸,pH 8.0 | Ø |
|
Tris-甘氨酸 SDS, pH 8.3 | Ø |
|
Tris-HCl | 500 mM |
|
Tris-HEPES SDS,pH 8.0 | 纯 |
|
Triton X-100 | 5% | Ø |
吐温 20 | 3% | Ø |
尿素 | 3 M |
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Y-Per | Ø |
|
GPCR 提取&稳定试剂 | 1:2 |
|
细胞表面蛋白分离试剂盒 | 纯 |
|
* 可接受结果,但标准曲线部分失真。若要获得最佳结果,在标准品中添加等量污染物。
方法。Qubit 蛋白质 BR 检测和 Qubit 蛋白质检测按含常用缓冲液和污染物的 1,000 μ g/mL BSA 样本的说明执行。检测重复三次,且将 RFU 值与 0.9% NaCl、0.05% NaN3 中 BSA 的值进行比较。如果物质存在导致的蛋白质浓度估计误差低于 10%,则视为检测在指示浓度下与检测物质相容。所列举的浓度指的是蛋白质样本中的实际浓度。Ø 代表在最低测试浓度下不兼容的化合物。空白字段代表化合物未经该检测测试。
缓冲液 | 配方 |
碳酸钠-碳酸氢钠,pH 9.4 | 0.2 M 碳酸氢钠-碳酸氢钠,pH 9.4 |
磷酸盐缓冲液 (PBS) | 100 mM 磷酸钠,150 mM NaCl, pH 7.2 |
RIPA 裂解液 | 25 mM Tris,150 mM NaCl,1% DOC,1% NP-40,0.1% SDS,pH 7.6 |
Tris-缓冲盐水 (TBS) | 25 mM Tris,150 mM NaCl,pH 7.4 |
Tris-甘氨酸,pH 8.0 | 25 mM Tris,192 mM 甘氨酸,pH 8.0 |
Tris-甘氨酸-SDS,pH 8.3 | 25 mM Tris,192 mM 甘氨酸,0.1% SDS,pH 8.3 |
Tris-HEPES-SDS | 100 mM Tris,100 mM HEPES,3 mM SDS |
For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.