Dynabeads 泛小鼠 IgG 与小鼠 IgG 一抗相结合,非常适用于去除或阳性分离不同物种(例如人、大鼠)的细胞,具体取决于一抗的特异性。可直接分离任何样本(如全血、骨髓、MNC 悬浮液或组织消化物)中的细胞。
备注: 要阳性分离细胞以进行下游细胞应用(无微珠细胞),请使用等效的 CELLection™ 泛小鼠 IgG 产品。
分离原理
在分离细胞前,将小鼠 IgG 一抗添加到细胞样本中(间接技术)或预包被到微珠上(直接技术)。然后将 Dynabeads 与试管中的细胞样本混合。Dynabeads 将在短暂的孵育过程中结合靶细胞,然后用磁铁分离微珠结合细胞。
- 阳性分离 – 丢弃上清液并将微珠结合细胞用于下游应用(如分子分析或细胞培养)。
- 去除 – 丢弃微珠结合细胞并将剩余的未接触细胞用于任何应用。
材料描述
Dynabeads 泛小鼠 IgG 是均匀的超顺磁性聚苯乙烯微珠(直径 4.5 μm),包被了单克隆人抗小鼠 IgG 抗体。包被到 Dynabeads 上的抗体可识别所有小鼠 IgG 亚类并且具有 Fc 特异性。泛小鼠 IgG 抗体不会与人、大鼠、兔、豚鼠、绵羊、山羊或仓鼠 IgG 发生交叉反应。
提供的材料
Dynabeads 泛小鼠 IgG | 货号 | 体积 |
---|
以 pH 7.4、含 0.1% 牛血清白蛋白 (BSA) 和 0.02% 叠氮化钠 (NaN3) 的磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 的形式提供,浓度为 4 x 108 个 Dynabeads/mL。 | 110.41 | 5 mL |
| 110.42 | 5 x 5 mL |
每 5 mL 产品可用于处理多达 2 x 10
9 个细胞
所需的其他材料
Dynabeads 洗涤程序
使用前,应先洗涤 Dynabeads。
- 在小瓶中重悬 Dynabeads。
- 将所需体积的 Dynabeads 转移至试管中。
- 加入相同体积或至少 1 mL 的缓冲液1并混合。
- 将试管放入磁铁1分钟并丢弃上清液。
- 从磁铁中取出试管,在体积与 Dynabeads 初始体积(第2步)相同的缓冲液1中重悬洗过的 Dynabeads。
样本制备
可直接分离任何样本(如全血、骨髓、MNC 悬浮液或组织消化物)中的细胞。
有关推荐的样本制备程序,请访问 www.lifetechnologies.com/cellisolation 并点击我们的快速链接。
细胞分离的关键步骤
使用可以倾斜和旋转试管的混合器,确保 Dynabeads 不会沉淀在管底。孵育 Dynabeads 和细胞时,孵育温度必须介于 2-8°C 之间,以减少吞噬活性和其他代谢过程。对于每 mL 细胞样本,切勿使用少于 25 μL (1 x 107) Dynabeads,每个靶细胞应至少对应4个 Dynabeads。
表1:每 mL 细胞样本添加的 Dynabeads 体积。可以根据需要增加体积。
| 阳性分离 | 去除 |
---|
样本体积(1 x 107 个细胞/mL*) | 1 mL
| 1 mL |
Dynabeads 体积 | 25 μL | 50 μL |
每份产品处理的 细胞总数
| 2 x 109 个细胞
| 1 x 109 个细胞
|
* 如果细胞浓度增加,必须相应增加 Dynabeads 体积。细胞浓度可高达 1 x 108 个细胞/mL
细胞分离 – 间接技术
使用小鼠 IgG 抗体标记细胞
- 每 106 个靶细胞使用约 1 μg 一抗(小鼠 IgG)。
- 推荐的细胞浓度:1 x 107 个细胞/mL。
- 向细胞悬液中加入一抗并混合。
- 在 2-8°C 下孵育10分钟。
- 每 1 x 107 个细胞加入 2 mL 缓冲液1来洗涤细胞,然后以 300 x g 的速度离心8分钟。丢弃上清液。
- 以 1 x 107 个细胞/mL 的浓度在缓冲液1中重悬细胞。
- 继续分离或去除细胞
分离或去除细胞
- 根据表1向制备的样本中添加 Dynabeads。
- 在 2-8°C 下孵育20分钟(阳性分离)或30分钟(去除),同时轻轻倾斜和旋转试管。
- 使用双倍体积的缓冲液1,以减少未结合细胞的滞留(可选)。
- 将试管放入磁铁2分钟。
- 去除:将含有未结合细胞的上清液转移到新试管中,供进一步实验使用。
- 阳性分离: 使用下列程序丢弃上清液并轻轻洗涤微珠结合细胞4次:
7
- 在缓冲液/培养基中重悬细胞以用于下游应用。
细胞分离 – 直接技术
预包被 Dynabeads
- 每 25 μL (1 x 107) Dynabeads 使用 0.2-0.5 μg 一抗(小鼠 IgG)。
- 将洗过的 Dynabeads 转移到试管中。
- 加入小鼠 IgG 抗体。
- 孵育 > 30 分钟,同时轻轻倾斜和旋转试管。
- 将试管放入磁铁1分钟并丢弃上清液。
- 使用 2 mL 缓冲液1洗涤微珠两次。
- 从磁铁中取出试管,在体积与 Dynabeads 初始体积相同的缓冲液1中重悬洗过的 Dynabeads。
分离或去除靶细胞
- 根据表1向细胞中加入预包被的 Dynabeads。
- 在 2-8°C 下孵育20分钟(阳性分离)或30分钟(去除),同时轻轻倾斜和旋转试管。
- 使用双倍体积的缓冲液1,以减少未结合细胞的滞留(可选)。
- 将试管放入磁铁2分钟。
- 去除:将含有未结合细胞的上清液转移到新试管中,供进一步实验使用。
- 阳性分离:使用下列程序丢弃上清液并轻轻洗涤微珠结合细胞4次:
i) 每 1 x 107 个 Dynabeads 添加 1 mL 缓冲液1。
ii) 将试管放入磁铁1分钟并丢弃上清液。
7. 在缓冲液/培养基中重悬细胞以用于下游应用。
直接技术与间接技术的比较
在以下情况下,请使用间接技术:
- 使用了小鼠单克隆抗体的混合物。
- 需要非常高的去除效率。
- 小鼠单克隆抗体的亲和力较低。
- 细胞表达少量靶抗原。
- 直接技术带来的纯度不能令人满意。
在以下情况下,可以使用直接技术:
- 一抗的亲和力较高。
- 细胞表达大量靶抗原。
- 包被了一抗的 Dynabeads 需要备料。
抗体选择
一抗的选择是成功分离细胞的最重要因素。请注意,尽管一些抗体在其他免疫学检测中获得了不错的结果,但包被到微珠上时(直接技术),这些抗体的抗原结合效率可能降低。
使用小鼠 IgG 抗体标记细胞
- 用滴定法测量一抗以优化用量。
- 为避免非特异性结合细胞(例如单核细胞、B 细胞),在加入一抗前,先加入聚集 IgG 以阻断 Fc 受体。
- 分离细胞前,必须通过洗涤去除过量的抗体。
分离和去除靶细胞
- 去除密度梯度培养基(例如 Ficoll):在加入小鼠 IgG 抗体或 Dynabeads 前洗涤细胞。
- 去除血清中的可溶性因子:血清可能含有可溶性因子(例如抗体或细胞表面抗原),它们会干扰细胞分离方案。洗涤细胞一次可以减少这种干扰。
Invitrogen Dynal AS 符合质量体系标准 ISO 9001:2000 和 ISO 13485:2003。
储存/稳定性
如在未开封的情况下储存于 2-8°C 下,在标签上注明的失效日期前,本产品可一直保持稳定。请在 2-8°C 下储存已开封的小瓶并避免细菌污染。在储存期间和所有操作步骤中,始终让 Dynabeads 处于悬浮液中,因为干燥会导致性能降低。使用前,请充分重悬。
警告和限制
本产品仅用于研究目的。除非另有说明,否则不得用于任何动物或人的治疗或诊断。请遵循适当的实验室指南。本产品含有 0.02% 叠氮化钠(作为防腐剂,具有细胞毒性)。
不要用嘴吹打!
叠氮化钠可与铅和铜管发生反应,形成极易爆炸的金属叠氮化物。通过管道排放进行处置时,请用大量水冲洗,以防止叠氮化物积聚。分析证书 (CoA) 可应要求提供。材料安全数据表 (MSDS) 可在
获得。
- Andrade RM et al.(2003) CD154 activates macrophage antimicrobial activity in the absence of IFN-g through a TNF-a-dependent mechanism.J. Immunol.171: 6750-6756.
- Berlyn ICA et al.(2001) Generation of CD4+ and CD8+ T lymphocyte responses by dendritic cells armed with PSA/anti-PSA antigen/antibody) complexes.Clin.Immunol.101(3): 276:283.
- Hofmann I et al.(2002) Symplekin, a constitutive protein of karyo- and cytoplasmic particles involved in mRNA biogenesis in Xenopus laevis oocytes.Mol.Biol.Cell.13(5): 1665-1676.
- Högerkorp CM et al.(2003) CD44-stimulated human B cells express transcripts specifically involved in immunomodulation and inflammation as analysed by DNA microarrays.Blood 101: 2307-2313.
- Lee E et al.(2004) Increased expression of Interleukin 23 p19 and p40 in lesional skin of patients with Psoriasis Vulgaris.J. Exp.Med.199(1): 125-130.
- Llewelyn M et al.(2004) HLA Class II polymorphisms determine responses to bacterial superantigens.J. Immunol.172: 1719-1726.
- Morelli A et al.(2004) Endocytosis, intracellular sorting and processing of exosomes by dendritic cells.Blood 104: 3257-3266.
- Saemann MD et al.(2002) Bacterial metabolite interference with maturation of human monocyte-derived dendritic cells.J. Leukocyte Biol.71(2): 238-246.
- Tiwari A et al.(2003) Extraction of cells for single-stage seeding of vascular-bypass grafts.Biotechnol.Appl.Biochem.38: 35-41.
- Woywodt A et al.(2004) Counting the cost: markers of endothelial damage in hematopoietic stem cell transplantation.Bone Marrow Transplantation 34: 1015-1023.
- Woywodt A et al.(2003) An improved assay for enumeration of circulating endothelial cells.Ann.Hematology 83(8): 491-494.
110.41.42.indd 版本002 2007年5月5日