泛小鼠 IgG – 去除或阳性分离不同物种的细胞

Dynabeads 泛小鼠 IgG 与小鼠 IgG 一抗相结合，非常适用于去除或阳性分离不同物种（例如人、大鼠）的细胞，具体取决于一抗的特异性。可直接分离任何样本（如全血、骨髓、MNC 悬浮液或组织消化物）中的细胞。

备注： 要阳性分离细胞以进行下游细胞应用（无微珠细胞），请使用等效的 CELLection™ 泛小鼠 IgG 产品。

分离原理

在分离细胞前，将小鼠 IgG 一抗添加到细胞样本中（间接技术）或预包被到微珠上（直接技术）。然后将 Dynabeads 与试管中的细胞样本混合。Dynabeads 将在短暂的孵育过程中结合靶细胞，然后用磁铁分离微珠结合细胞。

• 阳性分离 – 丢弃上清液并将微珠结合细胞用于下游应用（如分子分析或细胞培养）。
• 去除 – 丢弃微珠结合细胞并将剩余的未接触细胞用于任何应用。

材料描述

Dynabeads 泛小鼠 IgG 是均匀的超顺磁性聚苯乙烯微珠（直径 4.5 μm），包被了单克隆人抗小鼠 IgG 抗体。包被到 Dynabeads 上的抗体可识别所有小鼠 IgG 亚类并且具有 Fc 特异性。泛小鼠 IgG 抗体不会与人、大鼠、兔、豚鼠、绵羊、山羊或仓鼠 IgG 发生交叉反应。

提供的材料

• 磁铁 (Dynal MPC™)：   有关磁铁建议，请访问 www.lifetechnologies.com/magnets-selection。
• 兼具倾斜和旋转功能的混合器。
• 缓冲液1：含 0.1% BSA 的 PBS，pH 7.4。
• 小鼠 IgG 抗体。

Dynabeads 洗涤程序

使用前，应先洗涤 Dynabeads。

1. 在小瓶中重悬 Dynabeads。


2. 将所需体积的 Dynabeads 转移至试管中。


3. 加入相同体积或至少 1 mL 的缓冲液1并混合。


4. 将试管放入磁铁1分钟并丢弃上清液。


5. 从磁铁中取出试管，在体积与 Dynabeads 初始体积（第2步）相同的缓冲液1中重悬洗过的 Dynabeads。

样本制备

可直接分离任何样本（如全血、骨髓、MNC 悬浮液或组织消化物）中的细胞。

有关推荐的样本制备程序，请访问 www.lifetechnologies.com/cellisolation 并点击我们的快速链接。

细胞分离的关键步骤

使用可以倾斜和旋转试管的混合器，确保 Dynabeads 不会沉淀在管底。孵育 Dynabeads 和细胞时，孵育温度必须介于 2-8°C 之间，以减少吞噬活性和其他代谢过程。对于每 mL 细胞样本，切勿使用少于 25 μL (1 x 10⁷) Dynabeads，每个靶细胞应至少对应4个 Dynabeads。

表1：每 mL 细胞样本添加的 Dynabeads 体积。可以根据需要增加体积。

* 如果细胞浓度增加，必须相应增加 Dynabeads 体积。细胞浓度可高达 1 x 10⁸ 个细胞/mL

细胞分离 – 间接技术

使用小鼠 IgG 抗体标记细胞

• 每 10⁶ 个靶细胞使用约 1 μg 一抗（小鼠 IgG）。
• 推荐的细胞浓度：1 x 10⁷ 个细胞/mL。

1. 向细胞悬液中加入一抗并混合。


2. 在 2-8°C 下孵育10分钟。


3. 每 1 x 10⁷ 个细胞加入 2 mL 缓冲液1来洗涤细胞，然后以 300 x g 的速度离心8分钟。丢弃上清液。


4. 以 1 x 10⁷ 个细胞/mL 的浓度在缓冲液1中重悬细胞。


5. 继续分离或去除细胞

分离或去除细胞

1. 根据表1向制备的样本中添加 Dynabeads。


2. 在 2-8°C 下孵育20分钟（阳性分离）或30分钟（去除），同时轻轻倾斜和旋转试管。


3. 使用双倍体积的缓冲液1，以减少未结合细胞的滞留（可选）。


4. 将试管放入磁铁2分钟。


5. 去除：将含有未结合细胞的上清液转移到新试管中，供进一步实验使用。


6. 阳性分离：   使用下列程序丢弃上清液并轻轻洗涤微珠结合细胞4次：

⁷



7. 在缓冲液/培养基中重悬细胞以用于下游应用。

细胞分离 – 直接技术

预包被 Dynabeads

• 每 25 μL (1 x 10⁷) Dynabeads 使用 0.2-0.5 μg 一抗（小鼠 IgG）。

1. 将洗过的 Dynabeads 转移到试管中。


2. 加入小鼠 IgG 抗体。


3. 孵育 > 30 分钟，同时轻轻倾斜和旋转试管。


4. 将试管放入磁铁1分钟并丢弃上清液。


5. 使用 2 mL 缓冲液1洗涤微珠两次。


6. 从磁铁中取出试管，在体积与 Dynabeads 初始体积相同的缓冲液1中重悬洗过的 Dynabeads。

分离或去除靶细胞

1. 根据表1向细胞中加入预包被的 Dynabeads。


2.  在 2-8°C 下孵育20分钟（阳性分离）或30分钟（去除），同时轻轻倾斜和旋转试管。


3. 使用双倍体积的缓冲液1，以减少未结合细胞的滞留（可选）。


4. 将试管放入磁铁2分钟。


5. 去除：将含有未结合细胞的上清液转移到新试管中，供进一步实验使用。


6. 阳性分离：使用下列程序丢弃上清液并轻轻洗涤微珠结合细胞4次：

            i) 每 1 x 10⁷ 个 Dynabeads 添加 1 mL 缓冲液1。
            ii) 将试管放入磁铁1分钟并丢弃上清液。

  7.   在缓冲液/培养基中重悬细胞以用于下游应用。

直接技术与间接技术的比较

在以下情况下，请使用间接技术：

• 使用了小鼠单克隆抗体的混合物。
• 需要非常高的去除效率。
• 小鼠单克隆抗体的亲和力较低。
• 细胞表达少量靶抗原。
• 直接技术带来的纯度不能令人满意。

在以下情况下，可以使用直接技术：

• 一抗的亲和力较高。
• 细胞表达大量靶抗原。
• 包被了一抗的 Dynabeads 需要备料。

抗体选择

一抗的选择是成功分离细胞的最重要因素。请注意，尽管一些抗体在其他免疫学检测中获得了不错的结果，但包被到微珠上时（直接技术），这些抗体的抗原结合效率可能降低。

使用小鼠 IgG 抗体标记细胞

• 用滴定法测量一抗以优化用量。
• 为避免非特异性结合细胞（例如单核细胞、B 细胞），在加入一抗前，先加入聚集 IgG 以阻断 Fc 受体。
• 分离细胞前，必须通过洗涤去除过量的抗体。

分离和去除靶细胞

• 去除密度梯度培养基（例如 Ficoll）：在加入小鼠 IgG 抗体或 Dynabeads 前洗涤细胞。
• 去除血清中的可溶性因子：血清可能含有可溶性因子（例如抗体或细胞表面抗原），它们会干扰细胞分离方案。洗涤细胞一次可以减少这种干扰。

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