성능 데이터

세포 회수 및 생존력

T세포 세척과 농축에서 생존력 및 회수

섬세한 공정으로 T세포 세척과 농축에서 세포 생존도를 유지하면서 >90%의 세포를 회수할 수 있었습니다. 10회 이상의 실행에서 높은 재현성을 보였습니다.

200x T세포 농축

CTS Rotea 시스템을 사용하여 5억 개의 T세포를 1,000mL의 시작 부피에서 5mL로 농축하였으며 94%의 생존력을 유지하면서 97%의 세포 회수를 달성하였습니다.

Leukopak 백(bag)에서 높은 PBMC 회수

CTS Rotea 시스템은 여러 도너(n=7)를 대상으로 적혈구 용해 완충액을 조합한 Leukopak 백으로부터 약 90% PBMC 회수를 달성할 수 있었습니다.

세포 농축 및 산출 부피

작은 부피로 높은 농도(200X)

5 x 10⁸ 개의 T 세포가 작은 부피로 농축되었습니다.

샘플 데이터

공정 시간

투입 부피(L)
 공정 시간(분)
 세포 회수
T 세포 세척 및 농축 (1x106 cells/mL)
0.5 13 >90%
1.0 18
3.0 50
5.0 116
10.0 230
투입 부피(L)
 공정 시간(분)
 세포 회수
PBMC 분리
~0.25 (¼ Leukopak bag) 25
 >90%
~0.5 (½ Leukopak bag) 45
~1.0 (전체 Leukopak bag) 85
5 116
10 230

PBMC 분리 비교: CTS Rotea 시스템 vs Ficoll ® 배지

유세포 분석 데이터는 30분 미만의 시간이 걸리는 CTS Rotea 기기를 사용한 PBMC 세포 분리가 2시간의 Ficoll® 배지 분리와 유사한 결과를 가져온다는 것을 보여줍니다.

PBMC 조성 비교: CTS Rotea 시스템 vs 수동 Ficoll® 폴리머 단일 도너 Leukopak이 2개로 분할되고, PBMC는 CTS Rotea 시스템 또는 수동 Ficoll 배지 프로토콜을 사용하여 분리되었습니다. PBMC는 단핵구, B, NK 및 T세포를 식별하기 위해 연속 게이팅을 사용하여 평가되었습니다. CTS Rotea 시스템(A)의 처리 시간은 30분 미만이며 2시간의 Ficoll 분리(B)와 동일한 결과를 얻었습니다.

T 세포 품질 및 조성

유세포분석 데이터는 CD3⁺ 총 T 세포 집단 내의 CD4/CD8 T 세포 조성이 CTS Rotea 기기로 세척 및 농축된 이후에도 크게 변하지 않는 것을 보여줍니다.

세척 및 농축 후 T 세포 품질 및 조성

 

CTS Rotea 시스템을 사용하여 건강한 도너로부터 PBMC가 분리된 후, T 세포는 배양 증식되었으며 유세포 분석을 사용한 CD4 및 CD8 마커에 대한 평가가 실시되었습니다. 그런 다음, CTS Rotea 시스템을 사용하여 세척하고 농축한 후 다시 평가되었습니다. 비교 결과에 따르면 CD4 및 CD8 수가 두 분석 간에 일관적이며, 이들의 상대적 비율이 CTS Rotea 시스템 처리의 영향을 받지 않는다는 것을 보여줍니다.

연구용 또는 세포, 유전자 또는 세포-기반 제품 제조용.