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Nasopharyngeal swab 검체는 SARS-COV-2 바이러스 RNA(각각 검출 한계 1배 또는 3배)의 250 copies/mL(왼쪽) 또는 750 copies/mL(오른쪽)로 스파이크되고 Wash 3과 함께(+) 또는 없이(–) MagMAX Viral/Pathogen Kit(카탈로그 번호 A42352)를 사용하여 스파이크된 샘플 200μL 또는 400μL에서 RNA를 3회 추출했습니다. 50μL에서 elution 후 4개의 RNA 타겟(색상 기호)에 대해 qRT-PCR을 통해 샘플을 3회 분석했습니다. 각 대상의 CT 값은 매우 일관적이고(기호들이 면밀히 모임) 샘플 부피와 세척 조건 간에 거의 동일하여 간소화된 lower-volume 프로토콜을 검증했습니다. 모든 음성 시료는 “검출되지 않음”(데이터 표시되지 않음)의 Ct 값을 가졌습니다.
KingFisher와 MagMAX Multi-Sample Ultra 2.0 Kit(카탈로그 번호 A36570)를 사용하여 두 명의 도너의 전혈에서 DNA를 분리하였습니다. 샘플 >400µL이 24-well 플레이트에서 large-volume 프로토콜을 사용하여 처리되었으며, 샘플 50~400µL은 96-well 플레이트에서 small volume 프로토콜을 사용하여 처리되었습니다. (동일 플레이트에서 50µL 및 400µL 샘플이 동시에 실행되더라도 샘플 부피 정규화가 필요하지 않았습니다.) 실행 시간은 45분이었습니다. (상부) 회수 부피는 작은 볼륨 및 큰 볼륨 입력 모두에서 선형이었습니다. (하부) A260/A280 그리고 A260/A230 및 비율은 샘플 볼륨 전반에 걸쳐 높은 순도를 보였습니다.
KingFisher에서 MagMAX FFPE DNA/RNA Ultra Kit(카탈로그 번호 A31881)을 사용하여 일치하는 코어 니들 생검과 미세 니들 흡인 샘플에서 DNA와 RNA가 추출되었습니다. 라이브러리가 준비되었고 샘플이 주형화되고(templated) 염기서열분석되었습니다. (A) 평균 리드(read) 길이 및 (B) DNA 맵핑 및 균일성과 같은 염기서열분석 매트릭스가 일관적이고 다양한 검체 유형에서 핵산의 기능적 회수를 시연해 보입니다.
Total RNA를 10명의 전립선 암 환자 및 건강한 10명의 혈청으로부터 MagMAX mirVana Total RNA Isolation Kit(카탈로그 번호 A27828)를 이용해 KingFisher에서 분리했습니다. TaqMan Advanced miRNA cDNA Synthesis Kit (카탈로그 번호 A28007) 및 TaqMan Advanced miRNA Assays(카탈로그 번호 A25576)를 이용하여 19 miRNA의 표현 수준이 qRT-PCR에 의해 측정되었습니다. y축은 각 miRNA에 대한 ΔCT 값을 표시하며 참조 mRNA로 정규화되었습니다. 건강한 남성 샘플(파란색)와 전립선암 샘플(녹색)의 큰 차이는 잠재적인 암 바이오마커를 식별합니다.
두 기증자의 대변, 소변 및 타액 샘플의 총 핵산이 KingFisher 에서 MagMAX Microbiome Ultra Nucleic Acid Isolation Kit(카탈로그 번호 A42357 및 A42358)를 사용하여 분리되었고, shotgun metagenomic 염기서열분석을 위해 제출되었으며 알려진 미생물 프로파일과 비교하였습니다. 그림은 모든 샘플에 대해 선택된 미생물군에 대한 존재량 heat maps를 보여줍니다. 연구 결과에 따르면 각 신체 상의 서식지에 따라 우세한 미생물의 종류가 다르며, 주로 소변과 타액 사이에 몇 가지의 공통된 종만 있는 것으로 확인되었습니다. 각 커뮤니티에서, 기증자 사이에 상당한 중첩이 있었지만, 개인의 차이점까지 나타났습니다.
캘리포니아 대학 데이비스 동물의학대학에서 실시한 연구에 따르면 전혈액, 대변 및 코 분비물은 개, 고양이 및 말 종에서 채취되었습니다. KingFisher와 진공 기반 자동 시스템에서 총 핵산(Total nucleic acid)이 추출되어 qPCR로 증폭되었습니다. 정량 분석 주기(CQ, Quantification cycle) 값은 두 가지 방법과 유사했으며 감지된 총 병원균의 수가 유사했습니다. 그러나 KingFisher를 사용한 추출 시간은 3배 더 빨라졌습니다.
CD81을 발현하는 Jurkat 세포가 anti-CD81 항체로 코팅된 Dynabeads Protein G(카탈로그 번호 10004D)에 의해 lysis 되고 인큐베이션되었습니다. CD81은 KingFisher Duo Prime 및 Flex 기기에서 최적화된 워크어웨이 IP 프로토콜을 사용하여 세 가지 복제 방식으로 세포 용해물에서 분리되었으며 수동 프로토콜과 비교하였습니다. 전기영동 및 웨스턴 블로팅을 통해 수동 프로토콜로 얻은 결과와 동일한 두 기기의 우수한 성능을 확인하였습니다.
infliximab 약물이 KingFisher에서 SMART Digest Trypsin Kit를 사용하여 분해되었습니다. LC-MS를 통한 UV 펩타이드 맵 분석은 항체의 가벼운 사슬과 무거운 사슬 모두에 대해 100%의 전체 염기서열 범위를 확인하였습니다. 다른 데이터에서 자동 프로토콜은 단백질 분해 경험이 없는 사람에게도 재현성이 있고 사용이 간편한 것으로 나타났습니다.
SW480 대장 암 세포에서 유래한 CD9+ 엑소좀을 CD9를 타겟하여 KingFisher에서 분리한 후 염색하고 유세포분석 하였습니다. Jurkat 세포로부터의 CD9- 엑소좀이 대조군으로 포함되었습니다. 히스토그램에서 (B)는 SW480 세포 중에서 뚜렷하게 구별되는 CD9+ 집단(빨간색)을 나타내며, (C)는 Jurkat 대조군과의 비교를 나타냅니다. (A)는 scatter plot 및 gating profile을 표시합니다.
연구용으로만 사용하십시오. 진단용으로는 사용할 수 없습니다.