그림 설명 내 특정 키트 및 시약에 대한 추가적인 성능 데이터는 카탈로그 번호 링크에서 확인하세요. 추가 애플리케이션 데이터를 보려면 이 섹션과 ‘리소스’ 페이지에 나열된 애플리케이션 노트를 다운로드하십시오.


SARS-COV-2 테스트

Nasopharyngeal swab 검체는 SARS-COV-2 바이러스 RNA(각각 검출 한계 1배 또는 3배)의 250 copies/mL(왼쪽) 또는 750 copies/mL(오른쪽)로 스파이크되고 Wash 3과 함께(+) 또는 없이(–) MagMAX Viral/Pathogen Kit(카탈로그 번호 A42352)를 사용하여 스파이크된 샘플 200μL 또는 400μL에서 RNA를 3회 추출했습니다. 50μL에서 elution 후 4개의 RNA 타겟(색상 기호)에 대해 qRT-PCR을 통해 샘플을 3회 분석했습니다. 각 대상의 CT 값은 매우 일관적이고(기호들이 면밀히 모임) 샘플 부피와 세척 조건 간에 거의 동일하여 간소화된 lower-volume 프로토콜을 검증했습니다. 모든 음성 시료는 “검출되지 않음”(데이터 표시되지 않음)의 Ct 값을 가졌습니다.

다른 샘플 전처리 워크플로우를 사용하는 인위적 SARS-CoV-2 양성 nasopharyngeal swab 샘플의 Ct 값.


전혈에서 DNA의 회수 및 순도

KingFisher와 MagMAX Multi-Sample Ultra 2.0 Kit(카탈로그 번호 A36570)를 사용하여 두 명의 도너의 전혈에서 DNA를 분리하였습니다. 샘플 >400µL이 24-well 플레이트에서 large-volume 프로토콜을 사용하여 처리되었으며, 샘플 50~400µL은 96-well 플레이트에서 small volume 프로토콜을 사용하여 처리되었습니다. (동일 플레이트에서 50µL 및 400µL 샘플이 동시에 실행되더라도 샘플 부피 정규화가 필요하지 않았습니다.) 실행 시간은 45분이었습니다. (상부) 회수 부피는 작은 볼륨 및 큰 볼륨 입력 모두에서 선형이었습니다. (하부) A260/A280 그리고 A260/A230 및 비율은 샘플 볼륨 전반에 걸쳐 높은 순도를 보였습니다.

전혈에서 분리한 DNA의 회수 및 순도.


FFPE 암 샘플의 염기서열분석 일관성

KingFisher에서 MagMAX FFPE DNA/RNA Ultra Kit(카탈로그 번호 A31881)을 사용하여 일치하는 코어 니들 생검과 미세 니들 흡인 샘플에서 DNA와 RNA가 추출되었습니다. 라이브러리가 준비되었고 샘플이 주형화되고(templated) 염기서열분석되었습니다. (A) 평균 리드(read) 길이 및 (B) DNA 맵핑 및 균일성과 같은 염기서열분석 매트릭스가 일관적이고 다양한 검체 유형에서 핵산의 기능적 회수를 시연해 보입니다.

암 연구 샘플의 염기서열분석.


전립선암에 대한 miRNA 바이오마커 스크리닝

Total RNA를 10명의 전립선 암 환자 및 건강한 10명의 혈청으로부터 MagMAX mirVana Total RNA Isolation Kit(카탈로그 번호 A27828)를 이용해 KingFisher에서 분리했습니다. TaqMan Advanced miRNA cDNA Synthesis Kit (카탈로그 번호 A28007) 및 TaqMan Advanced miRNA Assays(카탈로그 번호 A25576)를 이용하여 19 miRNA의 표현 수준이 qRT-PCR에 의해 측정되었습니다. y축은 각 miRNA에 대한 ΔCT 값을 표시하며 참조 mRNA로 정규화되었습니다. 건강한 남성 샘플(파란색)와 전립선암 샘플(녹색)의 큰 차이는 잠재적인 암 바이오마커를 식별합니다.

암 연구 샘플의 염기서열분석


미생물군 식별

두 기증자의 대변, 소변 및 타액 샘플의 총 핵산이 KingFisher 에서 MagMAX Microbiome Ultra Nucleic Acid Isolation Kit(카탈로그 번호 A42357A42358)를 사용하여 분리되었고, shotgun metagenomic 염기서열분석을 위해 제출되었으며 알려진 미생물 프로파일과 비교하였습니다. 그림은 모든 샘플에 대해 선택된 미생물군에 대한 존재량 heat maps를 보여줍니다. 연구 결과에 따르면 각 신체 상의 서식지에 따라 우세한 미생물의 종류가 다르며, 주로 소변과 타액 사이에 몇 가지의 공통된 종만 있는 것으로 확인되었습니다. 각 커뮤니티에서, 기증자 사이에 상당한 중첩이 있었지만, 개인의 차이점까지 나타났습니다.

두 기증자로부터의 샘플 3개에 대한 미생물 열지도


수의학 병원균 검출

캘리포니아 대학 데이비스 동물의학대학에서 실시한 연구에 따르면 전혈액, 대변 및 코 분비물은 개, 고양이 및 말 종에서 채취되었습니다. KingFisher와 진공 기반 자동 시스템에서 총 핵산(Total nucleic acid)이 추출되어 qPCR로 증폭되었습니다. 정량 분석 주기(CQ, Quantification cycle) 값은 두 가지 방법과 유사했으며 감지된 총 병원균의 수가 유사했습니다. 그러나 KingFisher를 사용한 추출 시간은 3배 더 빨라졌습니다.

qPCR을 이용한 수의학 병원균 검출.


Immunoprecipitation

CD81을 발현하는 Jurkat 세포가 anti-CD81 항체로 코팅된 Dynabeads Protein G(카탈로그 번호 10004D)에 의해 lysis 되고 인큐베이션되었습니다. CD81은 KingFisher Duo Prime 및 Flex 기기에서 최적화된 워크어웨이 IP 프로토콜을 사용하여 세 가지 복제 방식으로 세포 용해물에서 분리되었으며 수동 프로토콜과 비교하였습니다. 전기영동 및 웨스턴 블로팅을 통해 수동 프로토콜로 얻은 결과와 동일한 두 기기의 우수한 성능을 확인하였습니다.

수동 및 자동 방법을 이용한 CD81의 Immunoprecipitation(IP).


펩타이드 맵핑

infliximab 약물이 KingFisher에서 SMART Digest Trypsin Kit를 사용하여 분해되었습니다. LC-MS를 통한 UV 펩타이드 맵 분석은 항체의 가벼운 사슬과 무거운 사슬 모두에 대해 100%의 전체 염기서열 범위를 확인하였습니다. 다른 데이터에서 자동 프로토콜은 단백질 분해 경험이 없는 사람에게도 재현성이 있고 사용이 간편한 것으로 나타났습니다.

infliximab 약물 제품의 염기서열 커버리지 맵.


Exosome pull-down

SW480 대장 암 세포에서 유래한 CD9+ 엑소좀을 CD9를 타겟하여 KingFisher에서 분리한 후 염색하고 유세포분석 하였습니다. Jurkat 세포로부터의 CD9- 엑소좀이 대조군으로 포함되었습니다. 히스토그램에서 (B)는 SW480 세포 중에서 뚜렷하게 구별되는 CD9+ 집단(빨간색)을 나타내며, (C)는 Jurkat 대조군과의 비교를 나타냅니다. (A)는 scatter plot 및 gating profile을 표시합니다.

Dynabeads 마그네틱 비드로 분리된 엑소좀의 유세포분석.


연구용으로만 사용하십시오. 진단용으로는 사용할 수 없습니다.