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当社のオリゴは、幅広い合成スケール、精製オプション、および修飾をそろえております。カスタム DNA オリゴ合成に関しては、うまく機能させるために、異なる用途に応じて、幅広いスケールや純度が必要です。ここでは、お客様の用途に最適なオリゴ構成を選択する方法を説明いたします
PCR 用カスタムオリゴをご注文の際は、合成スケールによって反応数が決まります。以下の表では、PCR 反応量を 100 µL、オリゴの最終濃度を 0.1 ~ 0.5 µM と仮定しています。
合成スケール | 推定反応数 |
---|---|
25 nmol | 500 ~ 2,500 |
50 nmol | 1,000 ~ 5,000 |
200 nmol | 4,000 ~ 20,000 |
1 µmol | 20,000 ~ 100,000 |
10 µmol | 100,000 ~ 1,000,000 |
DNA の合成後、完成した DNA 鎖は、水酸化アンモニウムなどの塩基性溶液中でインキュベートすることにより、固相担体から遊離します。この溶液は、必要とされる完全長のオリゴだけでなく、合成が途中で止まった DNA 鎖(不完全配列)もすべて含んでいます。20 mer を合成する場合、溶液には 19 mer、18 mer、17 mer などの不完全配列が含まれます。含まれる不完全配列の量は、カップリング効率の影響を受けます。こうした不完全配列は、PCR などの用途で完全長の産物と競合する可能性があるため、オリゴをうまく利用するには不完全配列を除去しておく必要があるのです。
精製方法 | 概要 | メリット |
---|---|---|
脱塩 ( | オリゴは順相クロマトグラフィーカラムで処理され、塩類は除去されますが、不完全配列は除去されません。 | 塩類フリー DNA 溶液、そのまま使用可(追加の精製を行うことなく、多くの PCR およびシーケンシング用途に適合) |
カートリッジ (50 nmol : 7~80 mer、 | 逆相クロマトグラフィーに基づく精製法:完全長から不完全配列を除去します。 | 一部の用途において必要とされる完全長の配列を提供します。 |
HPLC (50 nmol+ : 7~80 mer) | 逆相高速液体クロマトグラフィー(HPLC)によって、カートリッジ精製と同じ方法で、不完全配列や未結合の標識分子を除去します。 | 一部の用途において必要とされる高純度プライマー(完全長が85%以上)を提供します。 |
PAGE (200 nmol+ : 7~100 mer) | サイズおよび立体構造に基づいて、完全長の産物と不完全配列とを分別する方法です。 | 突然変異生成やアダプター作成などの特定用途に必要とされる、最高純度の完全長オリゴ(85%以上)を提供します。 |
用途 | 提案される精製オプション |
---|---|
AFLP 解析 | 脱塩オリゴは、増幅制限酵素断片長多型において問題なく利用できます。 |
アンチセンス | HPLC 精製オリゴは、アンチセンス研究の文献においてもっとも頻繁に言及されています。HPLC 精製の収率については「最低収率表」をご参照ください。 |
ライブラリー作製時のファーストストランド cDNA 合成 | 一般に、ライブラリー構築時のファーストストランド cDNA 合成のためのオリゴには、制限酵素クローニング部位をコードする配列が 5' 末端に存在します。そのため、完全長のカートリッジ、HPLC、またはPAGE 精製オリゴのご使用が最良です。 |
蛍光シーケンシング | 当社の研究者において、4 種類すべての精製グレードとも問題なく利用できております。 |
ゲルシフトアッセイ | ゲルシフトアッセイの場合、均一な DNA フラグメント集団を得るため、カートリッジ、HPLC、および PAGE 精製オリゴが推奨されます。 |
GENETRAPPER スクリーニング | PAGE 精製オリゴが推奨されます。GeneTrapper システムのテイリング反応に用いるプライマーは、あらかじめフェノール抽出およびエタノール沈殿にて処理しておく必要があります。脱塩グレードのオリゴをご購入の場合は、PAGE 精製プロトコールを利用して PAGE 精製を行うことが可能です。 |
等温シーケンシング | この用途では、脱塩オリゴを差し支えなくご利用いただけるほか、カートリッジ、HPLC、PAGE 精製も適しています。 |
マイクロアレイ | アレイへのプリンティングには、標準的な脱塩オリゴを差し支えなくご利用いただけます。 |
PCR | 標準的な PCR では、脱塩オリゴが十分に機能します。より高純度のものも同様に機能します。 |
5' 側に重要な配列(制限酵素認識部位、RNA ポリメラーゼプロモーターなど)のあるオリゴを用いた PCR | 効率を最高とするには、カートリッジ、HPLC、PAGE 精製オリゴが最良です。オリゴは 3' から 5' 側に合成されるため、不完全なオリゴ(n-x オリゴ)では 5' 側配列が失われています。5' 側配列が存在する完全長オリゴを用いることが重要であり、さもなければ、組み込む予定であった配列を含まない PCR 産物が生じることでしょう。 |
クローニングアダプターの作製 | 効率のよいクローニングには、完全長オリゴが最良です。完全長のカートリッジ、HPLC、または PAGE 精製オリゴをご利用ください。 |
特定部位突然変異導入 | 一般に、完全長の(例:カートリッジ、HPLC、PAGE 精製)オリゴが、変異クローンの出現率を最高とする傾向があります(特に、所期の変異がオリゴの 5' 末端近辺にある場合)。脱塩グレードのオリゴを用いた場合でも、希望する変異は得られます。しかし、一部の野生型親ベクタークローンはキャリーオーバーする傾向があります。 |
DNA の合成後、完成した DNA 鎖は、水酸化アンモニウムなどの塩基性溶液中でインキュベートすることにより、固相担体から遊離します。この溶液は、必要とされる完全長のオリゴだけでなく、合成が途中で止まった DNA 鎖(不完全配列)もすべて含んでいます。20 mer を合成する場合、溶液には 19 mer、18 mer、17 mer などの不完全配列が含まれます。含まれる不完全配列の量は、カップリング効率の影響を受けます。こうした不完全配列は、PCR などの用途で完全長の産物と競合する可能性があるため、オリゴをうまく利用するには不完全配列を除去しておく必要があるのです。
精製方法 | 概要 | メリット |
---|---|---|
脱塩 ( | オリゴは順相クロマトグラフィーカラムで処理され、塩類は除去されますが、不完全配列は除去されません。 | 塩類フリー DNA 溶液、そのまま使用可(追加の精製を行うことなく、多くの PCR およびシーケンシング用途に適合) |
カートリッジ (50 nmol : 7~80 mer、 | 逆相クロマトグラフィーに基づく精製法:完全合成物から不完全配列を除去します。 | 一部の用途において必要とされる完全長の配列を提供します。 |
HPLC (50 nmol+ : 7~80 mer) | 逆相高速液体クロマトグラフィー(HPLC)によって、カートリッジ精製と同じ方法で、不完全配列や未結合の標識分子を除去します。 | 一部の用途において必要とされる高純度プライマー(完全長が85%以上)を保証します。 |
PAGE (200 nmol+ : 7~100 mer) | サイズおよび立体構造に基づいて、完全長の産物と不完全配列とを分別する方法です。 | 突然変異生成やアダプター作成などの特定用途に必要とされる、最高純度の完全長オリゴ(85%以上)を提供します。 |
用途 | 提案される精製オプション |
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AFLP 解析 | 脱塩オリゴは、増幅制限酵素断片長多型において問題なく利用できます。 |
アンチセンス | HPLC 精製オリゴは、アンチセンス研究の文献においてもっとも頻繁に言及されています。HPLC 精製の収率については「最低収率表」をご参照ください。 |
ライブラリー作製時のファーストストランド cDNA 合成 | 一般に、ライブラリー構築時のファーストストランド cDNA 合成のためのオリゴには、制限酵素クローニング部位をコードする配列が 5' 末端に存在します。そのため、完全長のカートリッジ、HPLC、またはPAGE 精製オリゴのご使用が最良です。 |
蛍光シーケンシング | 当社の研究者において、4 種類すべての精製グレードとも問題なく利用できております。 |
ゲルシフトアッセイ | ゲルシフトアッセイの場合、均一な DNA フラグメント集団を得るため、カートリッジ、HPLC、および PAGE 精製オリゴが推奨されます。 |
GENETRAPPER スクリーニング | PAGE 精製オリゴが推奨されます。GeneTrapper システムのテイリング反応に用いるプライマーは、あらかじめフェノール抽出およびエタノール沈殿にて処理しておく必要があります。脱塩グレードのオリゴをご購入の場合は、PAGE 精製プロトコールを利用して PAGE 精製を行うことが可能です。 |
等温シーケンシング | この用途では、脱塩オリゴを差し支えなくご利用いただけるほか、カートリッジ、HPLC、PAGE 精製も適しています。 |
マイクロアレイ | アレイへのプリンティングには、標準的な脱塩オリゴを差し支えなくご利用いただけます。 |
PCR | 標準的な PCR では、脱塩オリゴが十分に機能します。より高純度のものも同様に機能します。 |
5' 側に重要な配列(制限酵素認識部位、RNA ポリメラーゼプロモーターなど)のあるオリゴを用いた PCR | 効率を最高とするには、カートリッジ、HPLC、PAGE 精製オリゴが最良です。オリゴは 3' から 5' 側に合成されるため、不完全なオリゴ(n-x オリゴ)では 5' 側配列が失われています。5' 側配列が存在する完全長オリゴを用いることが重要であり、さもなければ、組み込む予定であった配列を含まない PCR 産物が生じることでしょう。 |
クローニングアダプターの作製 | 効率のよいクローニングには、完全長オリゴが最良です。完全長のカートリッジ、HPLC、または PAGE 精製オリゴをご利用ください。 |
特定部位突然変異導入 | 一般に、完全長の(例:カートリッジ、HPLC、PAGE 精製)オリゴが、変異クローンの出現率を最高とする傾向があります(特に、所期の変異がオリゴの 5' 末端近辺にある場合)。脱塩グレードのオリゴを用いた場合でも、希望する変異は得られます。しかし、一部の野生型親ベクタークローンはキャリーオーバーする傾向があります。 |
当社でご提供している、一般的な修飾、蛍光色素修飾、Molecular Probes 色素は以下のとおりです。注記:修飾名にアスタリスク(*)が付与されているものは HPLC 精製グレードの製品となります。
注文時のコード | 吸収極大波長(nm) | 発光極大波長(nm) | モル吸光係数(OD/mol)
| |
---|---|---|---|---|
一般的な修飾 | ||||
アルデヒド | ALD | NA | NA | NA |
アミノ | AMN | NA | NA | NA |
ビオチン | BIO | NA | NA | NA |
リン酸 | PHO | NA | NA | NA |
チオール | THL | NA | NA | NA |
蛍光色素修飾 | ||||
フルオレセイン | FLO | 494 | 520 | 31,500 |
HEX | HEX | 535 | 553 | 31,580 |
ROX* | ROX | 576 | 601 | 22,500 |
TET | TET | 522 | 538 | 16,255 |
TAMRA* | TAM | 565 | 580 | 32,300 |
*これらの製品は HPLC 精製グレードです。 |
Molecular Probes 色素 | |||||
---|---|---|---|---|---|
色素名* | 注文時のコード | 色 | 吸収極大波長(nm) | モル発光極大波長(nm) | モル吸光係数
|
Alexa Fluor 488 | 488 | Green | 490 | 519 | 71,000 |
Alexa Fluor 532 | 532 | Green | 532 | 553 | 81,000 |
Alexa Fluor 546 | 546 | Yellow | 556 | 573 | 104,000 |
Alexa Fluor 555 | 555 | Orange/yellow | 555 | 565 | 150,000 |
Alexa Fluor 594 | 594 | orange | 590 | 617 | 73,000 |
Alexa Fluor 647 | 647 | Red | 650 | 655 | 239,000 |
Alexa Fluor 660 | 660 | Red | 663 | 690 | 132,000 |
Alexa Fluor 750 | 750 | purple | 749 | 755 | 240,000 |
Bodipy FL | BDA | Far Red | 502 | 510 | 82,000 |
Bodipy 530/550 | BDB | — | 534 | 551 | 77,000 |
Bodipy 493/503 | BDC | — | 500 | 509 | 79,000 |
Bodipy 558/569 | BDE | — | 559 | 568 | 97,000 |
Bodipy 564/570 | BDF | — | 563 | 569 | 142,000 |
Bodipy 576/589 | BDG | — | 575 | 588 | 83,000 |
Bodipy 581/591 | BDH | — | 581 | 591 | 136,000 |
Bodipy FL-X | BDI | — | 504 | 510 | 85,000 |
Bodipy TR-X | BDJ | — | 588 | 616 | 68,000 |
Bodipy TMR | BDK | — | 544 | 570 | 56,000 |
Bodipy R6G | BDL | — | 528 | 547 | 70,000 |
Bodipy R6G-X | BDM | — | 529 | 547 | 73,000 |
Bodipy 630/650 | BDN | — | 625 | 640 | 101,000 |
Bodipy 650/665 | BDP | — | 651 | 660 | 100,000 |
Cascade Blue Dye | CSB | Blue | 400 | 420 | 28,000 |
Marina Blue Dye | MNB | Blue | 362 | 459 | 19,000 |
Oregon Green 514 | OGB | Green | 506 | 526 | 85,000 |
Oregon Green 488 | OGC | Green | 495 | 521 | 76,000 |
Oregon Green 488-X | OGD | Green | 494 | 517 | 84,000 |
PACIFIC BLUE Dye | PFB | Blue | 416 | 451 | 36,000 |
RGA | Green | 504 | 532 | 78,000 | |
Rhodol Green Dye | RGB | Green | 496 | 523 | 63,000 |
Rhodamine Green-X | RGC | Green | 503 | 528 | 74,000 |
Rhodamine Red-X | RRA | Red | 560 | 580 | 129,000 |
Texas Red-X | TRX | Red | 583 | 603 | 136,000 |
*これらの製品は HPLC 精製グレードです。 |
当社でご提供している内部修飾とその注文コードは以下のとおりです。
代替塩基 | 注文時のコード | 概要 |
---|---|---|
Deoxyuracil(デオキシウラシル) | U | UDG と共に使用すれば、リガーゼフリーのクローニングが行えます。 |
Deoxyinosine(デオキシイノシン) | I | デオキシイノシンは 4 塩基のいずれとも塩基対を形成できますが、親和性は異なります。Martin らの報告によると、各塩基対の安定性はI:C、I:A、I:T、I:G の順に低下します。I:C 対の安定性は A:T 対よりもわずかに低いことがわかっています(Martin FH, Castro MM et al.(1985) Nucleic Acids Res.13: 8927)。 |
Phosphothiates(ホスフォチオエイト) | (下記参照) | ヌクレオチド間のホスホジエステル結合に含まれる酸素原子が硫黄原子により置換されます。この結合は、指定された塩基の3'末端側に導入されます。 |
F | ||
C-Phosphorothioate(C-ホスフォロチオエイト) | O | |
E | ||
T-Phosphorothioate(T-ホスフォロチオエイト) | Z | |
混合塩基* | 縮重塩基 ― 指定された塩基を等量ずつ供給して合成します。 | |
A+C+G+T | N | |
A+C+G | V | |
A+T+G | D | |
T+C+G | B | |
A+T+C | H | |
A+T | W | |
C+G | S | |
T+G | K | |
A+C | M | |
C+T | Y | |
A+G | R | |
*混合塩基は、50 nmol 以上のスケールでは任意の部位に指定可能です。25 nmol スケールの場合は、3' 末端以外の部位に指定可能です。混合塩基は、当該塩基の付加時に等量の各塩基を供給して合成します。合成反応効率の違いは最終産物に影響を及ぼし、効率がもっとも高い塩基が多くなる傾向があります。 |
For Research Use Only. Not for use in diagnostic procedures.