直接分离 (1-3) 或去除 (4,5) 脾脏或淋巴结细胞悬液或含 B 细胞的其他样本中的小鼠 B 细胞。为了快速得出一致的蛋白或基因表达分析结果,在 B 细胞仍附着到微珠时进行裂解,并直接处理以用于进一步分子分析。
分离原理
Dynabeads 与试管中的细胞样本混合。Dynabeads 将在短暂的孵育过程中结合靶细胞,然后用磁铁分离微珠结合细胞。
- 阳性分离 – 丢弃上清液并将微珠结合细胞用于下游应用。
- 去除 – 丢弃微珠结合细胞并将剩余的未接触细胞用于任何应用。
材料描述
Dynabeads 小鼠 pan B (B220) 是均匀的超顺磁性聚苯乙烯微珠(直径 4.5 μm),包被了对 B220 抗原具有特异性的单克隆抗体。从 B 细胞分化的早期 pro-B 阶段开始,在整个发育过程中,所有 B 细胞上都会表达 B220(也称为 CD45R)(6)。
提供的材料
5 mL Dynabeads 小鼠 pan B (B220)
以 pH 7.4、含 0.1% 牛血清白蛋白 (BSA) 和 0.02% 叠氮化钠 (NaN3) 的磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 的形式提供,浓度为 4 x 108 个 Dynabeads/mL。
本产品将处理多达 1 x 109 个白细胞(如脾细胞)。
所需的其他材料
Dynabeads 洗涤程序
使用前,应先洗涤 Dynabeads。
1. 在小瓶中重悬 Dynabeads。
2. 将所需体积的 Dynabeads 转移至试管中。
3. 加入相同体积或至少 1 mL 的 PBS(含 0.1% BSA)并混合。
4. 将试管放入磁铁1分钟并丢弃上清液。
5. 从磁铁中取出试管,使用缓冲液将 Dynabeads 重悬至原始体积(第2步)。
2.2 样本制备
小鼠细胞通常从脾脏、胸腺或淋巴结中获得,但也可使用其他来源。
有关推荐的样本制备程序,请访问 www.lifetechnologies.com/cellisolation 并点击我们的快速链接。
重要提示
- 在孵育和分离过程中,务必让细胞悬液和缓冲液保持低温 (2-8°C),以防 Dynabeads 被吞噬。
- 必须轻轻处理微珠结合细胞。不要过度吹打。
- 不建议使用含 Ca2+ 或 Mg2+ 的 PBS。
- BSA 可用 HSA 或 FCS 代替。柠檬酸钠可用 EDTA 代替。
- 请遵循磁铁建议,确保成功分离。
表1:每 1 mL 样本加入的 Dynabeads 体积。可以根据需要增加体积。
| 阳性 分离 | 去除
|
---|
细胞体积(高达 5 x 106 个白细胞/mL) | 1 mL | 1 mL
|
Dynabeads 体积 (每 5 x 106 个白细胞)
| 25 μL | 50 μL
|
每份产品处理的 白细胞总数 | 1 x 109 | 5 x 108 |
2.3 去除或阳性分离 B 阳性小鼠细胞
- 将适当体积的 Dynabeads 加入制备的样本中(有关体积,请参阅表1)。
- 在 2-8°C 下孵育20分钟(阳性分离)或30分钟(去除),同时轻轻倾斜和旋转试管。
- 将试管放入磁铁2分钟。
- 如需去除,将上清液转移至新试管中,待进一步使用。
- 如需阳性分离,丢弃上清液并洗涤微珠结合细胞3次(洗涤方法:在 PBS 中重悬至原样本体积),然后使用磁铁进行分离。对于分子研究,在细胞仍附着到微珠时进行裂解,并将上清液转移至新试管中以用于进一步 mRNA、蛋白或其他亚细胞分离。
Invitrogen Dynal AS 符合质量体系标准 ISO 9001:2000 和 ISO 13485:2003。
材料描述
Dynabeads FlowComp™ 是均匀的超顺磁性微珠(直径 2.8 μm)。以 pH 7.4、含 0.1% 牛血清白蛋白 (BSA) 和 0.02% 叠氮化钠 (NaN
3)(作为防腐剂)的磷酸盐缓冲盐水 (PBS) 的形式提供,浓度约为 1 × 10
9 个微珠 (10 mg)/mL。
储存/稳定性
如在未开封的情况下储存于 2-8°C 下,在标签上注明的失效日期前,本产品可一直保持稳定。请在 2-8°C 下储存已开封的小瓶并避免细菌污染。在储存期间和所有操作步骤中,始终让 Dynabeads 处于悬浮液中,因为干燥会导致性能降低。使用前,请充分重悬。
警告和限制
本产品仅用于研究目的。除非另有说明,否则不得用于任何动物或人的治疗或诊断。请遵循适当的实验室指南。本产品含有 0.02% 叠氮化钠(作为防腐剂,具有细胞毒性)。
不要用嘴吹打!
叠氮化钠可与铅和铜管发生反应,形成极易爆炸的金属叠氮化物。通过管道排放进行处置时,请用大量水冲洗,以防止叠氮化物积聚。分析证书 (CoA) 可应要求提供。材料安全数据表 (MSDS) 可在
获得。
- Giordia E et al.Modular usage of the HLA-DRA promoter in extra-hematopoietic and hematopoietic cell types of transgenic mice.FEBS Journal 2005; 272:3214–3226
- Zeytin H et al.Combination of a Poxvirus-Based Vaccine with a Cyclooxygenase-2 Inhibitor (Celecoxib) Elicits antitumor Immunity and Long-Term Survival in CEA.Tg/MIN Mice.CancerResearch 2004; 64:3668–3678.
- Liu et al.Sle1ab Mediates the Aberrant Activation of STAT3 and Ras-ERK Signaling Pathways in B Lymphocytes The Journal of Immunology, 2005; 174:1630–1637.
- Gardby E et al.Impaired CD40 - signalling in CD19-deficient mice selectively affects T2-deperdent isotype switching.Scand.J. Immunol.2001; 53:13-23
- Bai YL et al.L-selectin-dependent lymphoid occupancy is required to induce alloantigen-specific tolerance.J Immunol.2002; 168(4):1579-1589
- Hare KJ et al.Induction of thymocyte positive selection does not convey immediate resistance to negative selection.Immunology.2002; 105(2):163-170
- Hardy R et al.Resolution and Characterization of Pro-B Pre-Pro-B Cell Stages in Normal Mouse Bone Marrow.J Exp.Med.1991; 173 (5): 1213-1225.
114.41D.indd 版本007 2006年5月5日