介绍

本产品适用于直接磁性分离或去除脾脏或淋巴结细胞悬液中的小鼠 CD8+ T 细胞。为了快速得出一致的蛋白或基因表达分析结果,在 CD8+ T 细胞仍附着到微珠时进行裂解,并直接处理以用于进一步分子分析。如果需要无微珠 T 细胞,我们建议使用 Dynabeads FlowComp™ 小鼠 CD8(货号114.62D)。

分离原理

Dynabeads 与试管中的细胞样本混合。Dynabeads 将在短暂的孵育过程中结合靶细胞,然后用磁铁分离微珠结合细胞。

阳性分离 – 丢弃上清液并将微珠结合细胞用于下游分子应用。

去除
– 丢弃微珠结合细胞并将剩余的未接触细胞用于任何应用。

样本制备

小鼠细胞通常从脾脏、胸腺或淋巴结中获得,但也可使用其他来源。有关推荐的样本制备程序,请访问泛小鼠 IgG - 去除或阳性分离不同物种的细胞并点击我们的快速链接。 


所需的其他材料

  • 磁铁:有关磁铁建议,请参阅 Dynabeads mRNA 纯化试剂盒(从总 RNA 制备液中纯化 mRNA)
  • 兼具倾斜和旋转功能的混合器
  • 分离缓冲液(无菌):添加了 0.1% BSA 和 2mM EDTA 且不含 Ca2+ 和 Mg2+ 的磷酸盐缓冲盐水 (PBS)(例如 Gibco 货号 10010-023)。推荐的培养基:RPMI 1640(例如 Gibco 货号 12633-012)或含 10% FCS/FBS 的 DMEM,在 CO2 环境中培养。


备注:

  • BSA 可用人血清白蛋白 (HSA) 或 2% FBS/FCS 代替。
  • EDTA 可用 0.6% 柠檬酸钠代替。


重要提示:

  • 使用可以倾斜和旋转试管的混合器,确保 Dynabeads 不会沉淀在试管中
  • 孵育 Dynabeads 和细胞时,孵育温度必须介于 2-8°C 之间,以减少吞噬活性和其他代谢过程。
  • 请遵循推荐的体积和孵育时间
  • 移液时,避免出现气泡。

方案

此方案描述了磁性标记和分离小鼠 CD8+ T 细胞的步骤。

表1: 每 mL 样本添加的 Dynabeads 体积。

 阳性分离去除
细胞体积(高达 1 x 107 个白细胞/mL)*1 mL1 mL
每 107 个白细胞的 Dynabeads 体积25 μL50 μL
每份产品处理的白细胞总数
2 x 1091 x 109

* 当处理的细胞少于 1x10 7 个时,请使用以下所示的体积。处理更多细胞时,请相应增加所有试剂体积和总体积。


Dynabeads 洗涤程序

使用前,应先洗涤 Dynabeads。

  1. 在小瓶中重悬 Dynabeads。

  2. 将所需体积的 Dynabeads 转移至试管中。

  3. 加入相同体积或至少 1 mL 的分离缓冲液并混合。

  4. 将试管放入磁铁1分钟并丢弃上清液。

  5. 从磁铁中取出试管,在体积与 Dynabeads 初始体积(第2步)相同的分离缓冲液中重悬洗过的 Dynabeads。

去除或阳性分离 CD8+ T 细胞

  1. 根据表1将适当体积的 Dynabeads 加入制备的样本中。

  2. 在 2-8°C 下孵育20分钟(阳性分离)或30分钟(去除),同时轻轻倾斜和旋转试管。

  3. 将试管放入磁铁2分钟。

  4. 如需去除,将上清液转移至新试管中,待进一步使用。

  5. 如需阳性分离,丢弃上清液并洗涤微珠结合细胞3次(洗涤方法:在分离缓冲液中重悬至原样本体积),然后使用磁铁进行分离。

对于分子研究,在细胞仍附着到微珠时进行裂解,并将上清液(裂解物)转移至新试管中以待进一步处理。

基本信息

Invitrogen Dynal AS 符合质量体系标准 ISO 9001:2000 和 ISO 13485:2003。

储存/稳定性

如在未开封的情况下储存于 2-8°C 下,在标签上注明的失效日期前,本产品可一直保持稳定。请在 2-8°C 下储存已开封的小瓶并避免细菌污染。在储存期间和所有操作步骤中,始终让 Dynabeads 处于悬浮液中,因为干燥会导致性能降低。使用前,请充分重悬。

警告和限制

本试剂盒仅供研究使用。

请遵循适当的实验室指南。本产品含有 0.02% 叠氮化钠(作为防腐剂,具有细胞毒性)。不要用嘴吹打!叠氮化钠可与铅和铜管发生反应,形成极易爆炸的金属叠氮化物。通过管道排放进行处置时,请用大量水冲洗,以防止叠氮化物积聚。

不要用嘴吹打!

分析证书 (CoA) 可应要求提供。材料安全数据表 (MSDS) 可在 获得。

参考文献

  1. Djouad F et al (2003) Immunosuppressive effect of mesenchymal stem cells favors tumor growth in allogenic animals.Blood 102: 3837-3844.

  2. Martin S et al (2004) Fas-mediated inhibition of CD4+ T cell priming results in dominance of type I CD8+ T cells in the immune response to the contact sensitizer trinitrophenyl.J. Immunol.173: 3178-3185.

  3. Puliaev R et al (2004) Differential requirements for IFN-g in CTL maturation in acute murine graft-versus-host disease.J. Immunol.173: 910-919

  4. Gorbachev AV et al (2004) CD40 engagement enhances antigen-presenting Langerhans cell priming of IFN-g-producing CD4+ and CD8+ T cells independently of Il-12.J. Immunol.173: 2443-2452.


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114.47D.indd  版本002      2007年5月5日

仅供科研使用,不可用于诊断目的。