Feeder-Dependent Culture of Human Induced Pluripotent Stem Cells (hiPSCs)

介绍

诱导多能干细胞 (iPSC) 是利用各种方法从成纤维细胞等成体细胞类型中衍生而来的。iPSC 通常维持在一层失活的鼠胚胎成纤维细胞 (MEF) 饲养层细胞上。细胞可以在这些条件下维持数代,且不影响细胞的增殖或多能性和分化潜能。本实验方案描述了如何在饲养层细胞上培养成熟的 iPSC。

需要的材料

  • Dulbecco 改良 Eagle 培养基 (D-MEM)(货号 10569-010
  • 经 ESC 验证的胎牛血清 (FBS)(货号 10439-024
  • 含 GlutaMAX™-I 的 D-MEM/F-12 (1X)(货号 10565-018
  • KnockOut™ 血清替代物 (KSR)(货号 10828-028
  • MEM 非必需氨基酸溶液,10 mM(货号 11140-050
  • β-巯基乙醇,1000X(货号 21985-023
  • Gibco 小鼠胚胎成纤维细胞(经辐照)(货号 S1520-100)
  • 碱性成纤维细胞生长因子 (bFGF)(货号 PHG0264
  • GlutaMAX™-I (100X)(货号 35050-079
  • IV 型胶原酶(货号 17104-019)(用于酶传代)或 StemPro EZPassage™ 工具(货号 23181-010)(用于机械传代)
  • 细胞刮刀(Falcon,货号 353085)
  • 含钙、镁离子的 Dulbecco's PBS (DPBS)(货号 14040-133
  • 不含钙、镁离子的 Dulbecco's PBS (DPBS)(货号 14190-144
  • 附着因子(货号 S006100
  • 37°C 水浴
  • 适当的组织培养板和用品

注:作为含 GlutaMAX™-I 的 D-MEM/F-12 (1X)、KSR 和 bFGF 的替代物,您可以使用 KnockOut™
ESC/iPSC 培养基试剂盒(货号 A1412901)。

制备 MEF 培养皿

  1. 用附着因子 (AF) 溶液覆盖各新培养容器的整个表面,并将容器在 37°C 下孵育30分钟或在室温下孵育1小时。
  2. 在层流培养罩中采用无菌操作,临用前通过抽吸完全去除培养容器中的 AF 溶液。包被容器可立即使用或在室温下储存不超过24小时。
    注:在加入细胞或培养基之前,无需洗涤培养表面。
  3. 开始 hESC 培养或传代前 1-2 天,在附着因子包被培养容器中的 MEF 培养基上接种 30,000/cm2 有丝分裂失活
    MEF(见表1)
  4. 将 MEF 培养皿放入 37°C、5% CO2 培养箱中。
    注:MEF 培养皿在接种后可使用最长 3–4 天。

表1.失活 MEF 的所需用量

培养容器 表面积 (cm2) MEF 的数量 最佳用量 (mL)
6孔板
10 cm2/孔
3.0 × 1052.0 mL/孔
12孔板4 cm2/孔1.5 × 1051.0 mL/孔
24孔板2 cm2/孔0.8 × 1050.5 mL/孔
35 mm 培养皿10 cm23.0 × 1052.0 mL
60 mm 培养皿20 cm26.0 × 1054.0 mL
100 mm 培养皿60 cm21.8 × 10610.0 mL

图1.附着因子包被培养板上 MEF 培养基中的有丝分裂失活 MEF

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iPSC 解冻和铺板

  1. 从含有失活 MEF 的培养皿中吸出 MEF 培养基,
    在接种 iPSC 前 3–4 小时向培养皿中加入预热的 PSC 培养基。
  2. 在含有失活 MEF 细胞的培养皿上标记样品瓶的传代次数、日期和用户姓名首字母。
  3. 使用金属镊子从液氮储存设备中取出 iPSC 样品瓶。
    注:如果样品瓶从取出至解冻暴露于环境温度超过15秒,则将样品瓶转移至含有少量液氮的容器中。
  4. 戴手套滚动样品瓶,直至外部无霜。该过程需要约 10–15 秒。
  5. 将样品瓶浸入 37°C 水浴中,不要浸没瓶盖。轻轻涡旋样品瓶。
  6. 当仅剩余一块冰晶时,从水浴中取出样品瓶。
  7. 用 70% 乙醇喷洒样品瓶外部,并将其置于通风橱中。
  8. 使用 5 mL 无菌移液器,将细胞轻轻移至 50 mL 无菌锥形管中。
  9. 向 50 mL 锥形管中的细胞中缓慢逐滴加入 10 mL PSC 培养基。添加培养基时,来回轻轻晃动锥形管以混匀 iPSC。这可减少细胞的渗透压休克。
  10. 用 1 mL PSC 培养基冲洗样品瓶,然后加至含有细胞的 50 mL 锥形管中。
  11. 将细胞悬液转移至 15 mL 锥形管中,然后以 200 × g 离心细胞5分钟。
  12. 吸出上清液并弃去。
  13. 根据表2,通过用移液器在锥形管中轻轻上下吹吸细胞数次,将细胞沉淀重悬于足量的 PSC 培养基中。
  14. 从 MEF 培养皿中吸出用过的 PSC 培养基,并将解冻的集落缓慢加入培养皿中。将培养皿轻轻放入 37°C、5% CO2 培养箱中,然后前后左右快速短距离移动培养皿数次,使细胞分散在培养皿表面。
  15. 孵育细胞过夜。
  16. 第二天,使用无菌血清移液器去除用过的培养基及碎片,并将其转移至制备的 MEF 培养皿中。如果主培养皿有问题,您可以使用此培养皿作为备份。
  17. 根据表2中的用量向每个培养皿中加入新鲜的 PSC 培养基。将两块培养板轻轻放入 37°C、5% CO2 培养箱中过夜。
  18. 在显微镜下检查细胞,并每天更换两块培养板中用过的培养基。如果对
    超过一块培养板加料,则为每个孔使用不同的移液器,以降低污染风险。在一周内可能无法观察到集落。

表2.所需的 PSC 培养基用量

培养容器 表面积 (cm2) 用量 (mL)
6孔板10 cm2/孔2.0 mL/孔
12孔板4 cm2/孔1.0 mL/孔
24孔板
2 cm2/孔
0.5 mL/孔
35 mm 培养皿10 cm22.0 mL
60 mm 培养皿20 cm24.0 mL
100 mm 培养皿60 cm210.0 mL

图2. 在含有 KSR 的 PSC 培养基中的有丝分裂失活 MEF 饲养层上培养的 iPSC

iPSC 传代

何时分传细胞

通常,在出现以下情况之一时,分传细胞:

  • MEF 饲养层已使用2周。
  • iPSC 集落太密集或太大。
  • 分化增强。

分传比例

  • 分传比例可能有所不同,但通常在 1:2 和 1:4 之间。有时,细胞生长速度不同,需要调节分传比例。一般规则是遵循上次分传比例,并根据 iPSC 集落的外观调整该比例。
  • 如果细胞健康且集落间隔足够,则采用相同的分传比例。如果它们过于密集和拥挤,则提高该比例。如果细胞稀疏,则降低该比例。根据外观,细胞需要每 4-10 天分传一次。
  • iPSC 在用 PSC 培养基处理的 iMEF 培养板中生长良好。惯例是在 iPSC 传代之前,准备好新的饲养层培养板。

图3.可供传代的 PSC 集落。注意集落较大且集落彼此非常靠近。

使用胶原酶进行酶传代

您可以通过下述酶法或接下来的章节中介绍的机械方法传代细胞

  1. 从含有失活 MEF 的培养皿中吸出 MEF 培养基,
    在接种 iPSC 前 3–4 小时向培养皿中加入预热的 PSC 培养基。
  2. 在新的 MEF 培养皿上标记细胞系名称、新的传代次数、日期、分传比例和用户姓名首字母。将培养板放回培养箱中。
  3. 在解剖显微镜下,从待传代的培养皿中取出分化的集落。
  4. 用巴斯德吸管从培养皿中吸出用过的培养基。
  5. 向含有 iPSC 的培养皿中加入 IV 型胶原酶 (1 mg/mL) 溶液。根据不同的培养皿尺寸调整 IV 型胶原酶的用量(例如,35 mm 培养皿需要 1 mL IV 型胶原酶)。
  6. 将培养皿在 37°C、5% CO2 培养箱中孵育 30–60 分钟。请注意,不同批次的胶原酶的孵育时间可能有所不同;因此,需要检查集落以确定适当的孵育时间。
    注:作为 IV 型胶原酶的替代物,您可以使用浓度为 2 mg/mL 的分散酶,并在 37° C、5% CO2 培养箱中孵育培养皿 2–3 分钟。
  7. 集落边缘开始脱离培养板时停止孵育(见图4)。

    图4.用酶处理后,PSC 集落离开 iMEF 层

  8. 用巴斯德吸管吸出 IV 型胶原酶溶液。在不扰动附着细胞层的情况下,小心去除胶原酶。
  9. 向每个培养皿中加入 PSC 培养基。使用 5 mL 移液器上下吹吸,将细胞轻轻吹离培养皿表面
    。确保轻轻吹吸,以尽量减少气泡的形成。
  10. 将 iPSC 从孔表面取出后,将孔内容物合并至 15 mL 锥形管中。
  11. 使用 5 mL 移液器,向培养皿中加入 PSC 培养基,洗涤并收集任何残留细胞。吸出培养基和细胞,然后将收集的细胞加入 15 mL 锥形管中。
  12. 在 15 mL 锥形管中轻轻上下吹吸细胞数次,以进一步打散细胞集落。用移液管
    小心移取以减少泡沫。
    注:避免制备单细胞悬液。
  13. 以 200 × g 离心5分钟,然后从 hESC 沉淀上吸出上清液。
  14. 用适量 PSC 培养基重悬沉淀(请参见表2)。这取决于分传比例和所用培养皿的数量。
  15. 用 10 mL 移液器混匀细胞悬液。注意不要使集落过度破碎或在培养基中产生气泡。
  16. 向每个培养皿中加入适量细胞悬液。将培养皿放回培养箱中。
  17. 前后左右快速短距离移动培养皿数次,使细胞分散在培养皿表面。
  18. 过夜孵育细胞,使集落贴壁。每天更换用过的培养基。
    注:当细胞贴壁培养时,打开和关闭培养箱门时应小心,避免影响细胞在孔表面的均匀分布。

使用 StemPro EZPassage™ 一次性细胞传代工具进行机械传代

  1. 将含细胞的培养皿中的培养基更换为新鲜的 PSC 培养基。
  2. 在层流罩下打开装有 EZPassage™ 工具的包装,取出工具。
  3. 一只手握住培养容器,沿一个方向拉动(滚动)EZPassage™ 工具穿过整个培养皿。施加轻柔但稳定的压力,使整个滚轮接触培养皿,并在滚动过程中保持均匀的压力。
  4. 保持 EZPassage™ 工具平行于第1次运动轨迹滚动,直至覆盖整个培养皿。
  5. 旋转培养皿 90°,然后按上述步骤重复滚动细胞层。
  6. 完成后,请丢弃 EZPassage™ 工具,不要重复使用。如有必要,使用细胞刮刀将细胞团从培养板上刮下。
  7. 使用血清移液器,用培养基冲洗培养皿,使切割的集落悬浮在培养基中。
  8. 将含有集落的培养基转移到 15 mL 无菌管中。
  9. 将细胞集落以适当密度接种在已用有丝分裂失活 MEF 铺板的培养皿上。
  10. 将培养板放入 37°C、5% CO2 培养箱中。轻轻振摇培养板,使细胞均匀分布。

图5.使用 StemPro EZPassage™ 一次性细胞传代工具切割后的 PSC 集落

 

附录

  • 在 PSC 培养基中,含 GlutaMAX™-I 的 DMEM/F12(货号 10565-018)可替换为以下替代物:
    • KnockOut™ DMEM/F-12(货号 12660-012

      如需使用 KnockOut™ DMEM/F-12 制备 100 mL PSC 完全培养基,请在无菌条件下混合下表中列出的组分

      组分 储备液
      浓度
      最终
      浓度
      用量
      KnockOut™ DMEM/F-12(货号 12660-012

      1X78 mL
      KnockOut™ SR(货号 10828-028

      20%20 mL
      GlutaMAX™-I(货号 35050-061200 mM2 mM1 mL
      MEM 非必需氨基酸溶液
      (货号 11140-050
      10 mM0.1 mM1 mL
      bFGF(货号 PHG002410 μg/mL4 ng/mL40 μL
      β-巯基乙醇(货号 21985-0231000X1X100 μL
    • KnockOut™ DMEM(货号 10829-018

      如需使用 KnockOut™ DMEM 制备 100 mL PSC 完全培养基,请在无菌条件下混合下表中列出的组分。

      组分 储备液
      浓度
      最终
      浓度
      用量
      KnockOut™ DMEM(货号 10829-018

      1X78 mL
      KnockOut™ SR(货号 10828-028

      20%20 mL
      GlutaMAX™-I(货号 35050-061200 mM2 mM1 mL
      MEM 非必需氨基酸溶液
      (货号 11140-050
      10 mM0.1 mM1 mL
      bFGF(货号 PHG002410 μg/mL4 ng/mL40 μL
      β-巯基乙醇(货号 21985-0231000X1X100 μL
  • 替代物 bFGF 包装规格

产品名称 货号 产品规格
重组人碱性 FGF (AA 1-155)PHG026410 μg
重组人碱性 FGF (AA 1-155)PHG026625 μg
重组人碱性 FGF (AA 1-155)PHG0261100 μg
重组人碱性 FGF (AA 1-155)PHG02631 mg

  • 用于收获 iPSC 的解离酶/工具

解离酶/工具 应用 建议浓度
StemPro EZPassage™ 工具
(货号 23181-010
手动传代一次性无菌工具
StemPro Accutase
(货号 A11105-01
传代后形成单层细胞、
解离成单细胞
1X 即用型
(在 37°C 下孵育 1–2 分钟)
分散酶(货号 17105-041传代后形成集落样形态2 mg/mL
(在 37°C 下孵育 2–3 分钟)
TrypLE™ Express
(货号 12604-021
解离成单细胞1X 即用型

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MAN0006678           2012年3月5日

仅供研究使用。不得用于人或动物的任何治疗或诊断用途。

仅供科研使用,不可用于诊断目的。