MSC 仅占骨髓有核细胞总数的 0.01–0.0001%,需要通过体外细胞培养扩增获得足够的数量用于临床应用。MesenPRO RS 培养基是一款减血清 (2%) 培养基,专门配制用于支持人间充质干细胞 (MSC) 培养物的生长。与添加血清的传统培养基相比,MesenPRO RS 培养基有助于提高 MSC 扩增,同时保持相当的基因表达谱。使用 MesenPRO RS 培养基,MSC 能够在多次传代扩增的同时维持其多向分化潜能表型(即,分化为成骨细胞、成软骨细胞和成脂肪细胞谱系)。
在 cGMP 条件下生产的高度一致配方中将 FBS 浓度降低至 2%,有助于减小通常因经典培养基中使用的 10–20% FBS 而引入的变异性。FBS 中也有许多未知元素,比如信号转导分子、凋亡因子和营养物质。这些成分的不同浓度会引起批间差异,这意味着有些 FBS 批次不支持 MSC 培养。当用于复苏冻存 MSC 时,我们经 MSC 验证的 FBS(Ng 等人,2008;Kuçi 等人,2010)可较大限度地减少为确定最适合您应用的 FBS 批次而要检测多个 FBS 批次的需求。
与经典培养基 (DMEM + 10% FBS) 相比,MesenPRO RS 培养基(Sugii 等人,2010;Ng 等人,2008;Eibes 等人,2010;Tsigkou 等人,2010;Schraufstatter 等人,2009;Carreras 等人,2009)有助于提高 MSC 的扩增(图1),并维持三系中胚层分化潜能(图2)。
图1.与经典培养基相比,MesenPRO RS 培养基使得扩增在6天内提高 69–169%。使用标准技术从正常人骨髓单核细胞中分离出 MSC。将早期传代细胞以 3 × 103 或 5 × 103 个细胞/cm2 铺于6孔板上含 4 mM L-谷氨酰胺、5 μg/mL 庆大霉素和 10% 经 MSC 验证的 FBS 的 DMEM(低糖)培养基或含 2 mM L-谷氨酰胺和 5 μg/mL 庆大霉素的 MesenPRO RS 培养基中。在 37°C、含 5% CO2 的潮湿空气中孵育细胞,并在第3天进行补料。在第6天,使用 TrypLE 试剂收获细胞,并进行计数。数据表示两个平行孔的细胞计数平均值(通过学生 t 检验,p 值分别为 ≤ 0.007 和 ≤ 0.002)。
图2.在 MesenPRO RS 培养基中培养的人 MSC 保留了三系分化潜能。将在 MesenPRO RS 培养基中培养的人 MSC 接种到成脂、成软骨或成骨分化培养基中,培养14天,显示出 (A) 脂肪细胞(油红 O 脂质染色)、(B) 软骨细胞(阿利新蓝糖胺聚糖染色)和 (C) 成骨细胞(碱性磷酸酶染色)。
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- MesenPRO RS 培养基(货号 12746-012),由 MesenPRO RS 基础培养基和 MesenPRO RS 生长添加剂组成。该培养基也以 MesenPRO RS(原产地:新西兰)试剂盒形式提供(货号 E07-1000)。(PDF)
- L-谷氨酰胺-200mM (100X),液体(货号25030-149、25030-164)或 CTS GlutaMAX-I 添加剂(货号 A12860-01)
- 人 MSC (GMP)(StemPro BM 间充质干细胞)(货号 A15652)或人 ADSC(StemPro 人脂肪源性干细胞)(货号 R7788-115)
- CTS(细胞治疗系统)DPBS,不含氯化钙,不含氯化镁(货号 A12856-01)
- Countess 自动细胞计数仪(货号 C10227)
- 37°C 水浴
- 适当的组织培养容器和用品
制备培养基与材料
用于回收和培养 MSC 的 MesenPRO RS 培养基(500 mL 完全培养基)
- 将 MesenPRO RS 生长添加剂在 2–8°C 下解冻过夜,解冻后立即使用。不要在 37°C 下解冻。避免反复冻融 MesenPRO RS 生长添加剂。
- 要制备 500 mL MesenPRO RS 完全培养基,请在无菌条件下混合下列组分:
- MesenPRO RS 基础培养基 485 mL
- MesenPRO RS 生长添加剂 10 mL
- 200 mM L-谷氨酰胺或 GlutaMAX-I 5 mL (最终浓度 2 mM)
- 含添加剂的 MesenPRO RS 完全培养基可在 2–8°C 下避光储存最长2周。
注:在使用前,请在室温下预热当天所需的完全培养基,直到触感不再冰凉。请勿在 37°C 下预热培养基。
冻存 MSC 的复苏
注:我们建议您在解冻后将 MSC 置于 MesenPRO RS 完全培养基中复苏。*
*您可以使用传统培养基来复苏 MSC。要制备 500 mL 添加血清的 DMEM 完全培养基,在 2–8°C 下解冻经 MSC 验证的胎牛血清(USDA 批准)
- 在 37°C 水浴中快速解冻(<1 分钟)冷冻细胞。
- 使用移液管将冻存管中的全部内容物吸移到一个 50 mL 无菌锥形管中。
- 小心地逐滴(每10秒 2–3 滴)加入 5–7 mL 预热的 MesenPRO RS 完全培养基,同时轻轻涡旋锥形管。
- 再加入 5 mL 预热的 MesenPRO RS 完全培养基,同时轻轻涡旋锥形管。
- 将锥形管中的所有内容物转移到适当的组织培养瓶中。
- 在 37°C、含 5% CO2 的潮湿空气中孵育。
- 解冻后24小时,将用过的培养基更换为新鲜预热的 MesenPRO RS 完全培养基。
注:对于 MSC 的复苏,建议以 ≥7 × 103 个细胞/cm2 接种细胞进行初始复苏传代。
MSC 传代
开发 MesenPRO RS 的目的是培养已经使用标准贴壁分离和生长条件(例如,DMEM + 10% FBS)开始培养的人间充质干细胞,尚未针对直接来源于初生组织的 MSC 的初始扩增进行测试。开发的 MesenPRO RS 旨在培养大于克隆密度的 MSC(见第9步)。
建议将人间充质干细胞直接传代到 MesenPRO RS 完全培养基中。传代培养前,细胞融合度必须达到 60–80%,细胞存活率至少为 90%,生长速率必须处于对数中期。
注:以下程序适用于在 T-75 培养瓶 (75 cm2) 中进行的贴壁培养。应根据所需的容器尺寸相应调整用量。
- 在倒置显微镜上观察培养瓶,确认细胞可供传代(60–80% 融合度)。
- 从融合的单层细胞中吸出培养基和漂浮细胞并弃去。
- 使用 5–10 mL 不含钙、镁离子或酚红的 Dulbecco 磷酸盐缓冲盐水 (DPBS) 洗涤细胞。
- 去除 DPBS,向培养瓶中加入 5–7 mL 预热的 CTS TrypLE Select 酶。在 37˚C 孵育,直至细胞完全解离(约 3–5 分钟)。
- 采用倒置显微镜观察单层细胞,确保从培养瓶表面完全解离。
- 向培养瓶中加入 10 mL 预热的 MesenPRO RS 完全培养基,停止细胞解离。用移液管轻轻上下吹吸,使细胞分散成单细胞悬液。
- 将细胞悬液转移到无菌锥形管中。另外使用 5 mL MesenPRO RS 完全培养基洗涤培养瓶并合并到锥形管中。
- 以 100 × g 离心细胞悬液 5–10 分钟。
- 吸出上清液,并将细胞沉淀重悬于适量的预热 MesenPRO RS 完全培养基中。
- 使用 Countess 自动细胞计数仪(可选自动或手动方法)测定总活细胞密度。
- 以 3–5 × 103 个活细胞/cm2 接种培养瓶,并放回培养箱内。
注:为了获得最佳性能和细胞生长,应每 3–4 天使用新鲜的完全培养基对培养物进行重新补料。
冻存 MSC
- 在使用当天制备 2X 冻存溶液:
a).向 MesenPRO RS 完全培养基中加入 20% 二甲基亚砜 (DMSO),制备 10 mL 2X 冻存溶液。使用前在 4°C 下储存。
- MesenPRO RS 完全培养基 8 mL
- DMSO 2 mL (最终浓度 20%)
- 根据 MSC 传代的步骤 1-9,使用 MesenPRO RS 完全培养基收获细胞进行冻存。
- 在 0.5 mL 预热的 MesenPRO RS 完全培养基中复溶收获的细胞沉淀至预期最终细胞浓度的两倍(即,2 × 106 个细胞/mL)。
- 向细胞悬液中缓慢加入 0.5 mL 2X 冻存溶液,轻轻混匀,确保细胞分布均匀。
- 立即向预冷却 (2°C - 8°C) 的冻存管中加入所需用量的细胞悬液(即,1 mL)。
- 将冻存管置于 –70°C 的低温冷冻容器(例如 Mr. Frosty (1°C) 冷冻容器)中。
- 24小时后,将冷冻细胞转移至液氮(气相)中;建议在 –200°C 至 125°C 下储存。
参考文献
- Sugii S et al.(2010) Human and mouse adipose-derived cells support feeder-independent induction of pluripotent stem cells.Proc Natl Acad Sci U S A 107(8):3558–3563.
- Ng F et al.(2008) PDGF, TGF-beta, and FGF signaling is important for differentiation and growth of mesenchymal stem cells (MSCs): transcriptional profiling can identify markers and signaling pathways important in differentiation of MSCs into adipogenic, chondrogenic, and osteogenic lineages.Blood 112(2):295–307.
- Eibes G et al.(2010) Maximizing the ex vivo expansion of human mesenchymal stem cells using a microcarrier-based stirred culture system.J Biotechnol 146(4):194–197.
- Tsigkou O et al.(2010) Engineered vascularized bone grafts.Proc Natl Acad Sci U S A 107(8):3311–3316.
- Schraufstatter IU et al.(2009) C3a and C5a are chemotactic factors for human mesenchymal stem cells, which cause prolonged ERK1/2 phosphorylation.J Immunol 182(6):3827–3836.
- Kuçi S et al.(2010) CD271 antigen defines a subset of multipotent stromal cells with immunosuppressive and lymphohematopoietic engraftment-promoting properties.Haematologica 95(4):651–659.
- Carreras A et al.(2009) Obstructive apneas induce early release of mesenchymal stem cells into circulating blood.Sleep 32(1):117–119.