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人多能干细胞 (PSC)(包括胚胎干细胞 (ESC) 和诱导型多能干细胞 (iPSC))都是研究细胞结局规范、疾病建模和药物筛选的优秀资源。从 PSC 产生各种神经细胞的第一个重要步骤是将 PSC 诱导为神经干细胞 (NSC)。从人 PSC 衍生 NSC 的常规方法涉及拟胚体 (EB) 形成或与基质细胞系的共培养,具有几个缺点,包括耗时的方案和所得 NSC 质量的差异。我们开发了一种无血清神经诱导培养基,可在一周内将人 PSC 高效转化为 NSC,但无需费力的 EB 形成和 NSC 机械分离过程。
所需材料
* 供体外诊断使用。
免疫细胞化学试剂:
神经诱导培养基 (500 mL)
1.要制备 500 mL 完全 Gibco® 神经诱导培养基,请在无菌条件下混合以下组分:
2.完全神经诱导培养基可以在 2-8°C 的避光条件下储存最长 2 周。使用前,在 37°C 水浴中加热 Gibco® 神经诱导培养基 5-10 分钟。在 37°C 水浴中加热神经诱导培养基的时间不得超过 10 分钟,因为这可能会导致培养基降解。
注:Gibco® 神经诱导补充剂可以在 37°C 水浴中解冻 5 分钟或在 2-8°C 下过夜解冻,然后在 -5°C 至 -20°C 下等分并冷冻,可用于制备较小体积的完全培养基。避免重复解冻和冷冻神经诱导补充剂。
神经扩增培养基 (100 mL)
1.要制备 100 mL 完全神经扩增培养基,请在无菌条件下混合以下组分:
2.完全神经扩增培养基可以在 2-8°C 的避光条件下储存最长 2 周。使用前,在 37°C 水浴中加热神经扩增培养基 5-10 分钟。
ROCK 抑制剂 Y27632 溶液 (5 mM)
1.要制备 5 mM ROCK 抑制剂 Y27632 溶液,请在无菌条件下混合以下组分:
2.溶解后,通过 0.22 μm 过滤器过滤,将 20-50 μL 等分试样置于无菌管中,可在 -5°C 至 -20°C 的避光条件下储存最长 1 年。解冻的 Y27632 溶液可在 2-8°C 下储存最长 1 周。
注:Y27632 的分子量为 320.26,不同批次之间可能因含水量不同而存在差异。
用 Geltrex® 经 hESC 验证的无 LDEV 基底膜基质包被培养容器
1.在 2-8°C 下过夜解冻一瓶 Geltrex® 经 hESC 验证的无 LDEV 低生长因子基底膜基质。
注:解冻的 Geltrex® 基质可在 -5°C 至 -20°C 下等分并冷冻,或在 2-8°C 下储存最长 2 周。避免重复解冻和冷冻。
2.要制备工作溶液,请在冰上使用冷 Neurobasal® 培养基按 1:100 的比例稀释解冻的 Geltrex® 基质溶液。
3.使用 Geltrex® 基质溶液快速覆盖每个培养容器的整个表面(参阅表 1)。
4.在 37°C、5% CO2 培养箱中孵育培养容器 1 小时。
5.现在可以使用培养容器。在临使用前,从培养容器中吸出稀释的 Geltrex® 溶液。细胞可直接铺到 Geltrex® 基质包被的培养容器上,无需冲洗。包被的培养容器也可在 2-8°C 下储存最长一周。储存时,使用 Parafilm® 实验室薄膜密封培养容器以防止干燥。使用前,在室温下将 2-8°C 下储存的包被培养容器预热 30 分钟。
1.从在无饲养层条件(如玻连蛋白或 Geltrex® 底物上的 Essential 8™ 培养基中,或 Geltrex® 基质上的 StemPro® hESC SFM 中)下培养的高质量人 PSC(存在极轻微分化集落或无分化集落)开始。有关 PSC 培养方案,请访问 www.lifetechnologies.com/protocols。
注:
a. PSC(存在极轻微分化集落或无分化集落)的质量对于高效神经诱导至关重要。在 PSC 传代前,去除任何分化和部分分化的集落。
b. 在小鼠胚胎成纤维细胞上培养的人 PSC 也可用于神经诱导。
2.当 PSC 达到约 70%-80% 汇合度时,请按照 PSC 传代培养方案将它们分入 6 孔培养板中(参见 www.lifetechnologies.com/protocols)。
3.生成 PSC 细胞悬浮液后,将一部分细胞悬浮液(例如,从 6 孔板的一个孔中制备的 6 mL PSC 悬浮液中的 1 mL)转移至一个 15 mL 锥形管中,以估计 PSC 细胞悬浮液的细胞总数。
4.以 200 × g 离心含细胞的 15 mL 锥形管 3 分钟,并吸出上清液。
5.将 1 mL 预热的 StemPro® Accutase® 细胞解离试剂添加至含细胞的 15 mL 锥形管中,并在 37°C 下孵育 5 分钟。
6.用 1 mL 移液器轻轻上下吹吸细胞 5 次,将细胞解离为单细胞悬浮液。
7.使用您偏好的方法测定细胞总数。
8.将 2.5 mL PSC 培养基添加至包被 6 孔板的各孔中。
9.轻轻振摇含有 PSC 细胞悬浮液的锥形管,并以 2.5 × 105-3 × 105 PSC/孔将 PSC 铺至各孔中。例如,如果 PSC 悬浮液为 1 × 106 个细胞/mL,则向各孔中添加 0.25-0.3 mL PSC 悬浮液。
10.快速前后左右移动平板数次,使细胞分散在表面,并将其轻轻地置于 CO2 培养箱中。
注:
a. 传代比率取决于传代前 PSC 的汇合度和 PSC 细胞系中的变异性。神经诱导从 PSC 传代的第 1 天(传代后约 24 小时)开始。PSC 的起始密度应为约 10%-20% 汇合度。PSC 传代时,应以小团块形式而非单细胞悬浮液形式对细胞进行铺板。避免以单细胞形式对 PSC 进行铺板,因为这会导致细胞死亡增加。
b. 您可以在传代时将 10 μM ROCK 抑制剂 Y27632 添加至 PSC 培养基中,以此过夜处理细胞,从而防止细胞死亡。
1.NSC 衍生工作流程见图 1 A。在 PSC 传代第 1 天(10%-20% 汇合度,图 1 B),吸出消耗的培养基,以去除非附着细胞,并将 2.5 mL 预热的完全 Gibco® 神经诱导培养基添加至 6 孔板的各孔中。将平板放回培养箱中。
2.在神经诱导第 2 天,细胞集落的形态应均匀(图 1 C)。
注:
a. 如果 PSC 的质量在神经诱导前良好,则细胞的形态应与图像所示一致(图 1 C)。
b. 如果起始 PSC 的质量较差,则培养物中将以大量非神经集落为主,如图像所示(图 1 D-G)。在这种情况下,有两种选择i. 如果培养皿中有少数区域表现出这种形态,则可在去除此类非神经分化的集落后继续培养。如要去除非神经分化的集落,请用显微镜检查标记物标记所有非神经分化集落。倾斜平板,并去除孔上半部分的所有不需要的集落,具体方法为将巴斯德玻璃吸管指向标记的集落,以吸出细胞。将平板转动 180 度,然后重复上述操作。一次对一个孔执行此步骤,以防止细胞在没有培养基的情况下受到过大应力
ii.如果存在大量此类非神经集落,建议丢弃培养物并从高质量的 PSC 开始。
3.在第 2 天(切换至 Gibco® 神经诱导培养基后约 48 小时),通过从各孔中吸出消耗的培养基来更换培养基。添加 2.5 mL 预热的完全神经诱导培养基/孔。
4.在神经诱导第 4 天,细胞将达到汇合(图 2 A)。如果发现任何非神经分化,则标记所有集落,并使用巴斯德玻璃吸管去除此类不需要的集落。从各孔中吸出消耗的培养基。添加 5 mL 预热的完全神经诱导培养基/孔。
5.在神经诱导第 6 天,细胞应处于近似最大汇合度(图 2 B)。去除任何非神经分化细胞,并将 5 mL 完全神经诱导培养基添加至各孔中。
注:由于从培养第 4 天起细胞密度较高,因此神经诱导培养基的体积加倍对于细胞营养而言至关重要。此外,神经诱导后第 4 至 7 天观察到的细胞死亡应极少。在神经诱导第 4 至 7 天,如果细胞颜色变为淡褐色,且有许多漂浮细胞,则表明 PSC 的起始密度过高。在这种情况下,每孔每天更换 5 mL 神经诱导培养基。
1.在神经诱导第 7 天(图 2C),NSC (P0) 可进行收获和扩增。
2.在进行后续步骤前,制备 Geltrex® 基质包被的容器。
3.用巴斯德玻璃吸管从待传代的 6 孔板中吸出消耗的神经诱导培养基。
4.将 2 mL DPBS(不含 CaCl2 和 MgCl2)轻轻地添加至 6 孔板的各孔中,并吸出 DPBS 以冲洗细胞。
注:朝向孔壁添加 DPBS,以避免细胞分离。
5.将 1 mL 预热的 StemPro® Accutase® 细胞解离试剂添加至 6 孔板的各孔中,并在 37°C 下孵育 5-8 分钟,直至大多数细胞从培养容器的表面分离。
6.使用细胞刮棒将细胞从平板的表面分离下来。
7.使用 5 mL 移液器将细胞团块转移至 15 mL 或 50 mL 锥形管中。
8.将 1 mL DPBS 添加至 6 孔板的各孔中,以收集残留细胞,并将细胞悬浮液转移至锥形管中。
9.用 5 mL 或 10 mL 移液器轻轻地上下吹吸细胞悬浮液 3 次,以分散细胞团块。
10.将细胞悬浮液通过 100 μm 过滤器,并以 300 × g 离心细胞 4 分钟。
11.吸出上清液,用 DPBS(3-5 mL DPBS,用于 6 孔板的 1 个孔中的所有细胞)重悬细胞,并以 300 × g 离心细胞 4 分钟。
12.吸出上清液,用预热的完全神经扩增培养基(例如 1 mL,用于 6 孔板的 1 个孔中的所有细胞)重悬细胞。
13.使用您偏好的方法测定细胞浓度。
14.使用预热的完全神经扩增培养基将细胞悬浮液稀释至 2 × 105-4 × 105 个细胞/mL。
15.将 ROCK 抑制剂 Y27632 添加至细胞悬浮液中,使得最终浓度为 5 μM。
16.从 Geltrex® 基质包被容器中吸出 Geltrex® 基质溶液,并将稀释的细胞悬浮液添加至各培养板/培养皿中,以 0.5 × 105-1 × 105 个细胞/cm2 的密度对细胞进行铺板,如表 2 所示。
培养容器 | 表面积 (cm2) | 细胞悬浮液体积 (mL) |
---|---|---|
4 孔腔室玻片 | 1.8 cm2/孔 | 0.46 mL/腔室 |
6 孔板 | 9.6 cm2/孔 | 2.5 mL/孔 |
35 mm 培养皿 | 11.8 cm2 | 3 mL |
60 mm 培养皿 | 20 cm2 | 5 mL |
100 mm 培养皿 | 60 cm2 | 15 mL |
17.快速前后左右移动培养容器数次,使细胞分散在表面,并将其轻轻地置于培养箱中。
注:避免培养基溅到孔外侧,以避免污染。
18.过夜孵育后,更换为完全神经扩增培养基,以消除 ROCK 抑制剂 Y27632。此后,继续每隔一天更换神经扩增培养基(不含 Y27632)。
19.通常,NSC 在铺板后 4-6 天达到汇合(图 3A、B)。当 NSC 达到汇合时,可在完全神经扩增培养基中进一步扩增。扩增的 NSC 可以冻存(参见下面的方案)或按照您选择的方案分化为特定的神经细胞类型。
注:P0-P4 NSC 解离后,在铺板时需要使用最终浓度为 5 μM 的 ROCK 抑制剂 Y27632 进行过夜处理,以防止扩增和分化为神经胶质细胞和神经元细胞时的细胞死亡(图 3C)。
1.确保您的 NSC 在冻存前已至少传代至 P1。
2.当 NSC 达到汇合时,按照表 3,在 37°C 水浴中加热适量的 StemPro® Accutase® 试剂。
培养容器 | 表面积 (cm2) | StemPro® Accutase® 试剂体积 (mL) |
---|---|---|
6 孔板 | 9.6 cm2/孔 | 1 mL/孔 |
35 mm 培养皿 | 11.8 cm2 | 1 mL |
60 mm 培养皿 | 20 cm2 | 2 mL |
100 mm 培养皿 | 60 cm2 | 5 mL |
3.按照表 3,吸出消耗的培养基,并将预热的 StemPro® Accutase® 试剂溶液添加至培养容器中。
4.在 37°C 下孵育 3-5 分钟,直至所有细胞从培养容器表面分离。
5.使用 5 mL 移液器,将细胞转移至 15 mL 或 50 mL 锥形管中。
6.将适量的 DPBS 添加至容器的各孔中(例如 1 mL,用于 6 孔板的 1 个孔),以收集残留细胞,并将细胞悬浮液添加至管中。
7.用 5 mL 或 10 mL 移液器吹吸细胞悬浮液 3 次,以分散细胞团块。
8.以 300 × g 离心细胞 4 分钟,并吸出上清液。
9.用适量的 DPBS 重悬细胞,并以 300 × g 离心细胞 4 分钟。
10.吸出上清液,并用适量的神经扩增培养基重悬细胞。
11.使用您偏好的方法测定细胞浓度。
12.使用神经扩增培养基将细胞悬浮液稀释至 2 × 106-4 × 106 个细胞/mL。
13.添加相同体积的含有 20% DMSO 的神经扩增培养基。
14.将 1 mL 细胞悬浮液分配至各冷冻管中,并在 Nalgene® Mr. Frosty® 梯度降温盒(含异丙醇)中于 -80°C 下过夜冷冻细胞。
15.次日将细胞转移至液氮罐中,以进行长期储存。
1.按之前所述制备 Geltrex® 基质包被培养皿。
2.佩戴护目用具,因为储存在液氮液相中的冻存管在加热时可能会意外爆炸。
3.佩戴超低温手套。使用金属镊子从液氮储罐中取出 NSC 冷冻管。
4.将冻存管浸入 37°C 水浴中,不要浸没管盖。轻轻旋转冻存管。
5.当仅残留冰晶时,从水浴中取出冻存管。
6.在冻存管表面喷洒 70% 乙醇,并将其放入细胞培养通风柜中。
7.使用 1 mL 移液器将细胞轻轻移取至 15 mL 无菌锥形管中。
8.将 1 mL DPBS 添加至冻存管中,以收集常驻细胞。从冻存管中移出 DPBS,并将其逐滴添加至 15 mL 锥形管中。添加时,轻轻地来回移动锥形管以混合 NSC。这可减少细胞的渗透休克。
9.以 300 × g 离心细胞 5 分钟,并吸出上清液。
10.将细胞沉淀重悬于 DPBS 中。以 300 × g 离心 5 分钟,并吸出上清液。
11.在适量(例如 1 mL,用于 1 个冻存管的所有 NSC)预热的神经扩增培养基中重悬细胞沉淀。
12.使用您偏好的方法测定细胞浓度。
13.使用预热的神经扩增培养基将细胞悬浮液稀释至溶液中(含 2 × 105-4 × 105 个细胞/mL)。
注:如果 NSC 在第 4 次传代前进行冻存,则需要将最终浓度为 5 μM 的 ROCK 抑制剂 Y27632 溶液添加至细胞悬浮液中,以防止细胞死亡。
14.从 Geltrex® 基质包被容器中吸出 Geltrex® 基质溶液,并将适量稀释的细胞悬浮液添加至各培养容器中,以 0.5 × 105-1 × 105个细胞/cm2 的密度对细胞进行铺板(参见表 4)。
培养容器 | 表面积 (cm2) | 细胞悬浮液体积 (mL) |
---|---|---|
4 孔腔室玻片 | 1.8 cm2/孔 | 0.46 mL/腔室 |
6 孔板 | 9.6 cm2/孔 | 2.5 mL/孔 |
60 mm 培养皿 | 20 cm2 | 5 mL |
100 mm 培养皿 | 60 cm2 | 15 mL |
T25 培养瓶 | 25 cm2 | 6.5 mL |
T75 培养瓶 | 75 cm2 | 19.5 mL |
15.快速前后左右移动培养容器数次,使细胞分散在表面,并将容器轻轻地置于培养箱中。
注:避免培养基溅到孔外侧,以避免任何可能的污染。
16.在细胞铺板第 2 天,更换神经扩增培养基。继续每隔一天更换培养基,直至 NSC 达到汇合且可进行进一步扩增。
注:如果 NSC 低于 P4,则在 NSC 铺板时需要使用 ROCK 抑制剂 Y27632 进行过夜处理,以防止细胞死亡。在 NSC 铺板后第 1 天,用不含 Y27632 的完全神经扩增培养基更换培养基,以从培养物中消除 Y27632。
注:我们建议使用 Molecular Probes® 人神经干细胞免疫细胞化学试剂盒(货号 A24354)。该完整的免疫细胞化学试剂盒含有用于 4 种常见 NSC 标记物(巢蛋白、Pax6、Sox1 和 Sox2)的一抗、一套匹配的 Alexa Fluor® 标记二抗、细胞核 DNA 染色剂 (DAPI) 和执行染色方案所需的所有缓冲液。此外,多能性标记物 Oct4(货号 A13998,与 NSC 免疫细胞化学试剂盒中的试剂兼容)可用作 NSC 的阴性对照标记物。
1.以 1 × 105-3 × 105个细胞/cm2 的密度将解离的 NSC 铺至 4 孔腔室玻片上
注:对于 P0-P4 NSC,使用 5 μM ROCK 抑制剂 Y27632 进行处理对于防止细胞死亡至关重要。
2.在 NSC 铺板后第 1 天,取出消耗的培养基,添加 0.4 mL 固定溶液(含 4% 甲醛的 DPBS 溶液)/孔,并在室温下孵育 15 分钟。
注:朝向孔壁添加溶液,以避免细胞分离。
注:固定细胞可储存在 0.4 mL 1X DPBS(洗涤缓冲液)/孔中,并进行包裹以避免蒸发,在 2-8°C 下储存最长 2 周。
3.取出固定溶液,将 0.4 mL 透化溶液(含 0.5% Triton® X-100 的 DPBS 溶液)添加至各孔中,并在室温下孵育 15 分钟。
4.取出透化溶液,将 0.4 mL 封闭溶液(含 3% BSA 的 DPBS 溶液)添加至各孔中,并在室温下孵育 30 分钟至 1 小时。
5.取出封闭溶液,并将 0.2-0.4 mL 抗多能性 NSC 标记物的一抗(选项参见下文表 4;在封闭溶液中以 1:50-1:100 稀释)添加至各孔中。在室温下孵育 3 小时或在 2-8°C 下过夜孵育。
表 4.推荐的抗体染色选项。
颜色选项: | 绿色1(例如 FITC 滤光片) | 橙色2(例如 Cy®3/TRITC 滤光片)或红色3(例如 Texas Red® 滤光片) |
---|---|---|
抗体组合 # 1:巢蛋白 + Sox2 | ||
一抗 | 抗巢蛋白(宿主:小鼠) | 抗 Sox2(宿主:兔) |
二抗 | Alexa Fluor®488 驴抗小鼠 | Alexa Fluor®555 驴抗兔 或Alexa Fluor®594 驴抗兔 |
抗体组合 # 2:Sox1 + Pax6 或 Oct4 | ||
一抗 | 抗 Sox1(宿主:山羊) | 抗 Pax6 或抗 Oct4(宿主:兔) |
二抗 |
Alexa Fluor®488 驴抗山羊
| Alexa Fluor®555 驴抗兔 或Alexa Fluor®594 驴抗兔 |
1激发/发射波长 495/519 nm(绿色)
2激发/发射波长 555/565 nm(橙色)
3激发/发射波长 590/617 nm(红色)
6.在室温下,用 0.4 mL 1X DPBS(洗涤缓冲液)/孔冲洗细胞 3 次,每次冲洗 1-2 分钟。
7.取出洗涤缓冲液,并将 0.2 mL 适当二抗(参见表 4;在封闭溶液中以 1:250-1:500 稀释)添加至各孔中。在室温下孵育 1 小时。
8.在室温下,用 0.4 mL 1X DPBS(洗涤缓冲液)/孔冲洗细胞 3 次,每次冲洗 1-2 分钟。
注:如需要,通过在最后一个洗涤步骤中添加 1-2 滴/mL NucBlue® 固定细胞染色剂 (DAPI),对各孔中细胞的细胞核 DNA 进行染色。
9.立即对细胞进行成像。细胞也可在 4OC 下避光储存(进行包裹以避免蒸发)最长 1 周。
注:或者,取出洗涤缓冲液,在各孔中涂抹适量(约 1 滴)ProLong® Gold 抗淬灭试剂,盖上盖玻片,成像前在黑暗环境中过夜风干玻片。
下表列举了进行神经诱导实验时的一些潜在问题,以及可帮助排除故障的解决方案。
问题 | 解决方案 |
---|---|
Gibco® 神经诱导培养基是否适用于人 ESC 和 iPSC? | 是,Gibco® 神经诱导培养基适用于人 ESC 和 iPSC。 |
神经诱导培养基是否适用于在有饲养层(小鼠胚胎成纤维细胞,MEF)和无饲养层条件下培养的人 PSC? | 神经诱导培养基已针对在无饲养层和有饲养层条件下培养的人 PSC 进行了测试。为了消除 MEF 污染,我们强烈建议使用在无饲养层条件(如 Essential 8™ 培养基)下培养的人 PSC 开始神经诱导。 |
我应使用哪种培养形式进行神经诱导? | 神经诱导可从 6 孔板或培养皿上培养的人 PSC 开始。我们不建议使用培养瓶中培养的 PSC 开始神经诱导,因为难以去除培养瓶中 PSC 的非神经分化集落。 |
人 PSC 的起始密度过低或过高。 | 由于 PSC 的汇合、细胞团块传代、细胞贴壁和不同 PSC 细胞系的特性等变量参数,可能难以确定传代比率。按照方案估计铺板前 PSC 团块的细胞数量,PSC 铺板第 1 天(即神经诱导第 0 天)时 PSC 的汇合度应为 10%-20%。 |
培养板中具有非神经分化形态的集落过多。 | 在开始神经诱导前,选择并维持高质量的 PSC。 |
神经诱导期间细胞分离。 | 对于在 Essential 8™ 培养基中培养的 PSC,细胞可能在神经诱导期间分离。为了防止细胞分离,在 PSC 传代时,用 10 μg/mL 的玻连蛋白包被培养板。 |
神经诱导晚期大量细胞死亡。 | 检查细胞是否过度汇合。如果是,每天更换 Gibco® 神经诱导培养基(6 孔板每孔使用 5 mL)。 |
为了扩增和分化对解离的 NSC 进行铺板后大量细胞死亡。 | 如果 NSC 低于 P4,检查是否以 5 μM 的最终浓度将 ROCK 抑制剂 Y27632 添加至细胞悬浮液中。某些人 PSC 细胞系的 NSC 可能更容易解离。对于来源于这些 PSC 细胞系的 NSC,在 P4 后使用 Y27632 进行过夜处理可减少重新铺板后的细胞死亡。 |
NSC 在传代后 2-3 天达到汇合 | 来源于某些人 PSC 细胞系的 NSC 的增殖率可能增加。在这种情况下,将 NSC 铺板密度降低至 5 × 104 个细胞/cm2。 |
对冻存 NSC 进行解冻和铺板后大量细胞死亡。 | 如果在低于 P4 时冻存 NSC,检查是否在铺板后用 ROCK 抑制剂 Y27632 处理了 NSC。 |
用抗神经标记物抗体染色的 NSC 的染色模式异常。 | 未正确储存或处理的抗体可能导致染色质量损失,应予以更换。请注意,巢蛋白应染色细胞质中的微丝,而 Pax6、Sox1 和 Sox2 应染色细胞核。Oct4 应染色多能细胞的细胞核而不染色 NSC。 |
1.Gibco® PSC 神经诱导培养基是否能将小鼠 PSC 转化为 NSC?
Gibco® PSC 神经诱导培养基尚未在小鼠中进行测试,不建议将小鼠 PSC 转化为 NSC。
2.Gibco® PSC 神经诱导培养基衍生的 NSC 是否能分化为 PNS 中的细胞?
否。Gibco® PSC 神经诱导培养基衍生的 NSC 能分化为 CNS 中的神经元和神经胶质细胞。感觉神经元、交感神经元和副交感神经元以及 PNS 中的施万细胞来源于神经嵴的前体细胞。
LT177 出版物编号 MAN0008031 修订版 1